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AXIN2罕见变异与人类神经管畸形的相关性研究
徐雪冰1, 李建婷2, 包怡华3, 郭金3, 王芳3, 张霆3, 杨淑艳3     
1. 261053 山东 潍坊,潍坊医学院临床医学院儿科学教研室;
2. 030001 太原,山西医科大学生物化学与分子生物学教研室;
3. 100020 北京,首都儿科研究所生化免疫研究室
[摘要] 目的 探索AXIN2基因变异与神经管畸形(neural tube defects,NTDs)发生的相关性。方法 收集2004年6月-2013年12月山西省9家医院引产的100例NTDs胎儿肌肉组织样本,对其全基因组测序结果中的AXIN2基因的变异进行生物信息学分析,在相应的样本中利用Sanger测序证实变异结果。在NE-4C细胞系中转染AXIN2野生型及AXIN2变异型质粒,利用免疫荧光和蛋白免疫印迹实验进行基因功能验证,对携带AXIN2变异的人NTDs样本进行分析。结果 在100例NTDs样本中发现AXIN2基因上有5种变异,对其中3种变异[c.959A>T (p.D320V)、c.1250C>T(p.A417V)和c.1634G>A (p.G545E)]进行功能验证。细胞蛋白免疫印迹实验表明,D320V(P<0.05)和G545E(P<0.001)变异下调AXIN2蛋白表达,但3种变异均不影响β-catenin蛋白表达水平;免疫荧光实验表明,3种变异不影响AXIN2蛋白的亚细胞定位。在携带D320V及G545E变异的NTDs胚胎肌肉组织中,AXIN2的蛋白表达水平显著低于对照[D320V(P<0.05),G545E(P<0.01)]。结论 NTDs样本中鉴定到的AXIN2变异D320V及G545E下调AXIN2蛋白表达量,可能通过引起Wnt信号通路异常激活而导致神经管畸形的发生。
[关键词] 神经管畸形    AXIN2    遗传变异    Wnt信号通路    
Correlation of rare mutation in AXIN2 with human neural tube defects
XU Xuebing1, LI Jianting2, BAO Yihua3, GUO Jin3, WANG Fang3, ZHANG Ting3, YANG Shuyan3     
1. Department of Pediatrics, School of Clinical Medicine, Weifang Medical University, Weifang, Shandong Province, 261053;
2. Department of Biochemistry and Molecular Biology, Shanxi Medical University, Taiyuan, Shanxi Province, 030001;
3. Biochemical Immunology Laboratory, Capital Institute of Pediatrics, Beijing, 100020, China
[Abstract] Objective To investigate the correlation between genetic variations in the AXIN2 gene and the development of neural tube defects (NTDs). Methods Bioinformatics analysis was performed on AXIN2 gene variations identified through whole-genome sequencing of muscle tissue samples from 100 fetuses with NTDs collected from June 2004 to December 2013 among 9 hospitals in Shanxi Province. The identified variations were validated using Sanger sequencing. In NE-4C cell lines, wild-type AXIN2 and mutant AXIN2 plasmids were transfected, and gene functionality was assessed through immunofluorescence and Western blot assay. Analysis was also conducted on human NTDs samples carrying AXIN2 variations. Results Five distinct AXIN2 gene variations were detected in the 100 NTDs samples. Functional studies were conducted on three of these variations [c.959A > T (p.D320V), c.1250C > T (p.A417V) and c.1634G > A (p.G545E)]. Western blot assay revealed that, although none of the 3 variations had an impact on the levels of β-catenin protein expression, the D320V (P < 0.05) and G545E (P < 0.001) variations led to downregulation of AXIN2 protein expression. Immunofluorescence assay demonstrated that all 3 variations did not alter the subcellular localization of AXIN2 protein. In embryonic muscle tissues carrying the D320V and G545E variations, AXIN2 protein expression was significantly lower than those in the control group [D320V (P < 0.05), G545E (P < 0.01)]. Conclusion This study identifies AXIN2 gene variations (D320V and G545E) in NTDs samples that result in the downregulation of AXIN2 protein expression. These variations may potentially lead to abnormal activation of the Wnt signaling pathway, thus contributing to the development of neural tube defects.
[Key words] neural tube defects    AXIN2    gentic variation    Wnt signaling pathway    

神经管畸形(neural tube defects,NTDs)是由神经管闭合障碍造成的一种以无脑儿、脑膨出、颅脊柱裂及脊柱裂等为主要临床表现的先天性出生缺陷疾病[1-2]。在发育过程中,神经管闭合依次经过神经板形成、神经板塑性、神经板卷褶和神经板融合4个阶段,是一个由遗传和环境因素共同作用的复杂发育生物学过程。世界范围内NTDs的发生率为0.05%~0.2%,而我国NTDs的发生率高达0.2%~0.4%,其中山西地区NTDs发病率高达1.39%[1]。流行病学研究表明,遗传因素占NTDs致病因素70% 以上,在小鼠中已鉴定出240多个基因的遗传变异与NTDs的发生高度相关[2]。随着人类基因组学的发展,罕见变异在NTDs的发生机制中越来越被重视,例如VANGL1、VANGL2、PRICKLE1和FUZZY等基因变异均可导致NTDs的发生[3-6]。因此,通过高通量测序技术是挖掘NTDs致病相关变异的重要手段。

轴向抑制蛋白AXIN是重要支架蛋白,通过促进β-catenin代谢从而抑制Wnt/β-catenin信号通路及下游靶基因的表达。脊椎动物中存在2种AXIN蛋白(AXIN1和AXIN2),它们存在功能冗余,在蛋白质整体水平上有44% 的一致性,配体和其他蛋白质的结构域具有更高的相似性。AXIN1参与调控胚胎体轴发育,AXIN1基因失活可出现胚胎前后轴发育异常;将AXIN1 mRNA注射到非洲爪蟾胚胎中会抑制背部体轴形成;AXINFu/Fu小鼠会有胚胎死亡、神经管分叉和不同程度尾巴卷曲等表现[7]。胚胎发生期间AXIN2与Wnt-1、Wnt-3和Wnt-3a在原始条纹和背侧神经管中表达区域重叠,提示AXIN2在神经管的发育过程中发挥重要作用。

动物实验证明Wnt/β-catenin信号通路在神经发育期间激活或抑制都会导致NTDs的发生[8-10],由此假设:在人类中AXIN2基因变异引起了Wnt信号通路活性的异常并与神经管发育相关。为了验证这一假设,本研究采用病例-对照研究设计对AXIN2的编码区进行筛查,并对发现的AXIN2变异进行功能探讨,为进一步了解神经管畸形的致病机制提供新思路。

1 资料与方法 1.1 研究对象

延续本课题组前期的研究[11],于2004年6月-2013年12月在山西省中阳县人民医院、中阳县妇幼保健医院、交口县人民医院、交口县妇幼保健医院、柳林县人民医院、柳林县红十字医院、临县人民医院、临县中医院、临县妇幼保健院等9个中心收集具有NTDs表型的汉族流产胎儿样本100例。使用千人基因组计划中208名中国汉族人群作为对照。本研究所有样本采集均经首都儿科研究所伦理委员会(SHERLLM2019017) 批准。

1.2 AXIN2基因测序及生物信息学分析

对100例NTDs样本提取肌肉组织并进行全基因组测序[11]。提取全基因组DNA后,通过超声将其破碎为150 bp左右的片段,构建测序文库后在Illumina10×平台(美国Illumina公司)进行测序,测序的平均覆盖深度为30.2×,测序数据fastq与hg38参考系列进行对比。使用Genome Analysis Toolkit分析单核苷酸变异和插入/缺失,使用SpeedSeq软件分析结构变异和拷贝数变异,使用ANNOVAR对单核苷酸变异、结构变异及拷贝数变体进行注释。从全基因组测序的结果中调取AXIN2基因的所有遗传变异。采用聚合酶链式反应(polymerase chain reaction, PCR)扩增NTDs样品中含有AXIN2变异的区域,并进行Sanger测序以确认全基因组检测中AXIN2基因分型结果。参考外显子组聚合联盟数据库(exome aggregation consortium, ExAC)、千人基因组数据库和NCBI数据库,确认AXIN2罕见变异。采用PolyPhen2和SIFT等软件预测变异对AXIN2蛋白功能的影响;Vector NTI Suite在线软件对变异的氨基酸位点进行保守性估计;SnapGene软件对Sanger测序结果进行比对。

1.3 AXIN2相关质粒构建与实验细胞培养

pCS2-N-myc-AXIN2质粒由北京盛元科萌公司合成,利用KOD-plus高保真酶对野生型AXIN2表达载体进行定点突变PCR,从而得到突变型AXIN2表达载体,引物序列见表 1。所有质粒经过Sanger测序验证。HEK293T细胞购于北京市协和细胞库,培养在含10% 胎牛血清的DMEM中。NE-4C细胞来源于实验室库存,采用高糖DMEM培养基,使用前使用浓度为10 mg/mL的多聚赖氨酸包被培养皿2 h。各类细胞系均在37 ℃恒温,5% CO2恒定浓度培养箱内培养,每日换液,每隔2~3天根据细胞生长情况传代。

表 1 AXIN2相关质粒构建的引物及Sanger测序引物列表(5’→3’)
引物名称 上游 下游
check1 ATGCTTCTGCATCCAAGGAA CTCACCATCACAACCCAAAA
check2 CTCTGGCCCTTCTGCTTCCT GGAGTGGCTTTTGCATTTCG
D320V GAGTATGACAGACAGCAGCGTGGTC
GGCATCCCCCCCTACAGAGTGGGCT
CCAAGAAGCAGC
GCTGCTTCTTGGAGCCCACTCTGTAG
GGGGGGATGCCGACCACGCTGCTGT
CTGTCATACTC
A417V CACTGAACAGCAGAGAAGGAGTGCC
CACACAGCACCCCCTGAGC
GCTCAGGGGGTGCTGTGTGGGCACT
CCTTCTCTGCTGTTCAGTG
G545E GAGAGTGCACTGCTTCTGCCCCGAC
GGCAGCGAGTACTACTGCTACAG
CTGTAGCAGTAGTACTCGCTGCCGT
CGGGGCAGAAGCAGTGCACTCTC

1.4 质粒转染及蛋白免疫印迹实验

将HEK293T细胞均匀铺在6孔细胞培养板中,待细胞密度达到60%左右时,用lipo2000(美国Invitrogen公司,LipofectamineTM 2000 Reagent)转染试剂分别将AXIN2野生型及3种突变型表达质粒转染到细胞上。转染48 h后,用新加入PMSF的RIPA缓冲液提取蛋白,使用BCA法测定蛋白浓度。等量样品进行SDS-PAGE电泳并转移至PVDF膜上,将膜在5% 脱脂牛奶常温封闭2 h后,用抗AXIN2(美国Abcam公司),抗β-catenin(美国Abcam公司)和抗GAPDH(北京全式金生物公司)的抗体4 ℃孵育过夜。二抗(北京中杉金桥)室温下作用2 h,使用ECL检测系统进行检测。用Image J软件进行条带灰度值定量,用AXIN2相对于GAPDH的比值测定野生型(wild type, WT)和突变型AXIN2蛋白表达改变。独立实验进行3次。

1.5 免疫荧光实验

将NE-4C细胞爬片置于激光共聚焦培养皿中,待细胞密度为60%~70%时用lipo2000转染试剂将AXIN2野生型及3种突变型表达质粒进行细胞转染。转染48 h后,室温下用预冷的4%多聚甲醛固定细胞10 min,1% TritonX-100的PBS进行细胞透化处理10 min,加入5%山羊血清封闭60 min。再加入抗AXIN2、抗Myc抗体稀释液4 ℃过夜。洗涤后室温避光孵育荧光二抗(美国Jackson公司)1 h。加入DAPI(美国Invitrogen公司)染细胞核,避光15 min吸去DAPI,加入防淬灭封片剂并置于4 ℃避光保存。用荧光共聚焦显微镜进行拍摄。独立实验进行3次。

1.6 统计学分析

采用GraphPad Prism 7.0软件进行统计分析并生成图表,数据以x±s表示。两组之间用独立样本t检验进行统计学分析。P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 全基因组测序结果及生物信息学分析

本研究收集100例NTDs流产胎儿样本,妊娠周期为(20.7±4.7)周。无脑畸形占94%,颅脊柱裂占75%,脑膨出占26%,脊柱裂占2%;男性胎儿占60%,女性胎儿占37%,3%的胎儿性别未知。提取NTDs病例肌肉组织进行全基因组测序。

100例全基因组测序的NTDs流产样本中发现AXIN2基因中存在5种罕见变异(表 2),根据变异致病性评分,对D320V、A417V和G545E这3种变异进行了功能验证。ACMG致病性评级显示,D320V变异为不确定性临床意义,A417V变异为可能致病性,G545E变异为不确定性临床意义。变异氨基酸位点在AXIN2蛋白序列中的对应位置见图 1A,AXIN2蛋白共843个氨基酸,靠近N端有端锚聚合酶结合模体(tankyrase-binding motif,TBM),在氨基酸序列第88~200位处有G蛋白信号转导调节分子(regulators of G-protein singaling, RGS)结构域,C端有DIX二聚体基序(DIX结构域)。AXIN2可以和多种蛋白相结合,GSK3β蛋白结合位点位于氨基酸序列第327~413位;β-catenin蛋白结合位点位于氨基酸序列第413~476位。3种错义变异位点中,D320V和G545E是新发现的变异位点,A417V突变在数据库中已有记录(rs201460658)。

表 2 AXIN2变异位点信息及生物信息分析结果
核苷酸改变 氨基酸改变 基因组位置 外显子 SIFTa PolyPhen2b Freq_Alt(1 000 g)c 病例频率
c.959A>T D320V chr1765541555 Exon4 0.001 1.000 未知 1/100
c.1250C>T A417V chr1765537786 Exon6 0.131 0.237 3.594×10-3 4/100
c.1634G>A G545E chr1765537402 Exon6 0.168 0.986 未知 1/100
c.1807G>C A603P chr1765536969 Exon7 0.288 0.000 7.189×10-3 6/100
c.1481C>T P494L chr1765537555 Exon6 0.363 0.090 未知 1/100
a:SIFT功能预测评分<0.05表示该突变影响蛋白功能,>0.05表示该突变不影响蛋白功能;b:PolyPhen2评分0.957~1.000为有害,0.453~0.956为可能有害,0~0.452为无害;c:Freq-Alt(1 000 g)指非参照等位基因在千人基因组项目中的频率

A:变异氨基酸位点在AXIN2蛋白序列中的对应位置示意图  a:TBM,b:RGS结构域,c:GSK3β蛋白结合位点,d:β-catenin蛋白结合位点,e:DIX结构域  红框:示3种罕见变异所在的氨基酸位点;B:变异氨基酸位点的物种保守性分析 图 1 AXIN2基因及其D320V、A417V和G545E变异的位置示意图及保守性分析

运用在线预测工具PolyPhen2和SIFT对3种AXIN2变异位点进行功能预测结果显示:A417V变异不影响蛋白功能,为无害突变;D320V变异影响蛋白功能,为有害突变;G545E变异不影响蛋白功能,为有害突变(表 2)。利用Vector NTI Suite在线软件对3种变异氨基酸位点保守性进行估计,对比结果显示(图 1B),D320V和G545E变异所在的氨基酸位点在人、黑猩猩、小鼠、大鼠和斑马鱼5个物种间高度保守,A417V变异所在的氨基酸位点在人、黑猩猩、小鼠和大鼠等物种间高度保守,在斑马鱼中不保守。

2.2 病例样本变异位点确认

本研究在100例神经管畸形病例中发现13例NTDs患者携带5种AXIN2变异,其中有4例患者携带A417V变异,有1例患者携带D320V变异,有1例患者携带G545E变异,在对照组中均未发现这3种变异。3种变异患者基因型和临床表现见表 3。分别对携带这3种变异的病例来源基因组DNA进行Sanger测序来验证这3种变异是否真实(引物序列见表 1),D320V变异使用引物check1,A417V和G545E变异使用引物check2。测序结果显示(图 2),A417V、D320V和G545E这3种变异均以杂合状态检测到。

表 3 变异患者的基因型和临床表现
样本编号 氨基酸变异位点 周龄/周 性别 临床表现
WGC030532D D320V 32 无脑儿,开放性枕颈裂,枕部脑膜脑膨出,副脾,畸形引产
WGC030517D A417V 22 无脑儿,枕部脑膜脑膨出
WGC030524D A417V 18 无脑儿,枕颈部脊柱裂
WGC033714D A417V 20 完全型无脑畸形,颈枕胸脊柱裂,肾上腺发育不全,畸形引产
WGC033716D A417V 25 先天性无脑畸形(完全型),开放性胸腰骶脊柱裂;双侧肾上腺融合; 两肺膨胀不全;颅内出血;内脏淤血;畸形引产
WGC030544D G545E 17 无脑儿,枕颈胸脊柱裂,顶部脑膜脑膨出;唇腭裂;双肾上腺发育不良;畸形引产

蓝色背景条:示变异位点 图 2 AXIN2 3种变异与对照的Sanger测序结果

2.3 AXIN2基因变异对AXIN2蛋白水平的影响

AXIN2参与Wnt经典信号通路中降解复合体的形成,通过调控β-catenin水平抑制该信号通路。在HEK293T细胞中进行AXIN2野生型及D320V、A417V和G545E变异型质粒的过表达实验,以检测3种AXIN2变异是否会影响AXIN2及β-catenin蛋白的表达水平。为了检测质粒的转染效率,设立pCS2-myc-EGFP转染组作为报告基因,转染后24 h在荧光显微镜下观察绿色荧光蛋白(green fluorescent protein, GFP)的表达情况(图 3A);同时也在后续的免疫荧光实验中检测转染质粒中标签蛋白Myc的表达。蛋白免疫印迹实验结果显示(图 3B),与野生型比较,A417V变异不影响AXIN2蛋白表达水平,而D320V(P<0.05)和G545E(P<0.001)变异使AXIN2蛋白表达减少;然而3种变异均不影响β-catenin蛋白表达水平(图 3C),提示AXIN2敲除对β-catenin蛋白的水平没有影响。

A:细胞转染效率检测;B:AXIN2变异对AXIN2蛋白表达水平影响;C:AXIN2变异对β-catenin蛋白表达水平影响;a:P<0.05,b:P<0.001,与WT组比较 图 3 AXIN2变异对AXIN2蛋白及β-catenin蛋白表达水平影响 (n=3,x±s)

用携带D320V、A417V和G545E变异的肌肉组织及对应的对照进行免疫印迹实验以验证AXIN2罕见变异的影响:与对照组比较,携带D320V(P<0.05)及G545E(P<0.01)变异的肌肉组织样品AXIN2的表达水平显著降低,而携带A417V变异与对照组比较,AXIN2的表达无显著差异(图 4)。以上结果与体外实验结果相符。

a:P<0.05,b:P<0.01,与WT组比较 图 4 NTDs组织样本AXIN2 3种变异对AXIN2蛋白表达水平的影响 (n=3,x±s)

2.4 AXIN2错义变异不影响AXIN2蛋白的亚细胞定位

在正常组织中,AXIN2主要分布于细胞质和细胞核中,而在息肉和癌组织中会部分转移到细胞质中。为了检测3种变异是否会影响AXIN2的亚细胞定位,在NE-4C细胞中分别转染了带有Myc标签蛋白的质粒AXIN2野生型及D320V、A417V和G545E 3种变异型质粒和空载体质粒,并分别用Myc、AXIN2抗体进行免疫荧光实验。实验结果显示(图 5),野生型AXIN2主要定位于细胞质和细胞核中,而3种变异均不影响AXIN2蛋白的亚细胞定位。

图 5 转染AXIN2野生型及突变型质粒在NE-4C细胞中亚细胞定位

3 讨论 3.1 AXIN2变异与神经管畸形的发生有关

NTDs是一种由神经管闭合障碍引起的先天性出生缺陷疾病,受到基因与环境的相互作用。绝大多数NTDs患者会发生流产、死产和新生儿死亡等情况,极少数非开放性脊柱裂的患者能够幸存。因此,明确NTDs的发病机制不仅能对NTDs的干预和治疗提供更多的科学依据,同时可促进生殖健康。罕见变异是复杂疾病(包括NTDs)的致病遗传因素,越来越多的研究者对NTDs中的散发病例和罕见变异进行研究,如DNMT1突变可降低DNMT1的表达,这可能扰乱了DNMT1的靶基因的DNA甲基化平衡以及相应基因表达,从而与神经管畸形高度相关;人类NTDs的发生与PCP信号通路相关基因变异密切相关,而WNT5B基因参与PCP信号通路,它的变异可能通过影响PCP通路的正常传导而与神经管畸形的发生密切相关[12-15]。提示在NTDs发生的病理生理过程中,罕见变异扮演着重要角色。

既往研究表明,AXIN2与多种疾病相关,如乳腺癌、结直肠癌、胰腺癌和少牙畸形等[16-18]。AXIN2可以与β-catenin、泛素-蛋白质连接酶及SAMD等蛋白结合,并参与构成β-catenin降解复合体,同时也参与RNA稳定性、错配修复等过程[19-21]。本研究通过对具有NTDs表型的流产胎儿肌肉组织进行全基因组测序,鉴定出AXIN2基因上的A417V、D320V和G545E 3种罕见变异。运用PdyPhen 2和SIFT在线预测软件分析表明:A417V变异不影响蛋白功能,为无害突变;D320V变异影响蛋白功能,为有害突变;G545E变异不影响蛋白功能,为有害突变。A417V、D320V和G545E罕见变异所在的氨基酸位点在人、黑猩猩、小鼠、大鼠物种间高度保守。为了探究A417V、D320V和G545E这3种罕见变异的功能,构建野生型和突变型AXIN2表达载体,转染HEK293T细胞后,蛋白免疫印迹实验表明,D320V和G545E变异能够下调AXIN2蛋白表达水平,A417V变异对AXIN2蛋白表达水平无影响。并发现在携带D320V和G545E变异的NTDs样本中,AXIN2蛋白表达水平下降。但本研究没有同时检测AXIN1的蛋白水平,这需要在后续的研究中进一步探讨。

3.2 AXIN2变异可能致Wnt/β-catenin信号通路异常激活

Wnt/β-catenin信号通路是生物进化中一条高度保守的发育信号通路。该信号通路参与调控神经管增殖、细胞分化及凋亡等过程,是影响神经胚层发育和神经管闭合的关键信号通路之一,在调控神经板和神经管头尾模式的过程中至关重要。既往研究表明,LRP6Cd变异致使Wnt信号通路异常激活,导致小鼠出现尾椎缺陷和颅骨的NTDs表型[12]。同时,DVL2基因变异破坏DVL2蛋白的稳定性,并激活Wnt信号通路活性导致人类神经疾病的发生,如NTDs和第四脑室孔闭塞综合征(dandy-walker malformation,DWM)[22]。研究表明AXIN参与构成Wnt/β-catenin信号通路中的降解复合体[23-24],是该信号通路的关键负调控因子,AXIN通过促进β-catenin降解抑制Wnt经典信号通路和下游靶基因的表达[25]。有研究报道,AXIN1和AXIN2可能存在功能冗余,将小鼠AXIN1编码区替换为AXIN2的编码序列,没有明显的表型异常,反之亦然[26]。而AXIN1和AXIN2的生物学功能又有其特异性;AXIN2基因敲除的小鼠出现头骨畸形、头盖骨的缝合过早愈合[27],而AXIN1基因突变导致显性胚胎的尾部卷曲、缩短和隐性胚胎致死[28]。我们前期在叶酸缺乏NTDs人群中发现Wnt/β-catenin信号通路被激活,AXIN2异常表达[29]。为了论证A417V、D320V和G545E罕见变异是否影响β-catenin的表达水平,本研究在HEK293T细胞中进行AXIN2野生型及D320V、A417V和G545E变异型质粒的过表达实验,发现3种变异均不影响β-catenin的蛋白表达水平,与既往研究结果一致[30]

散发病例中罕见的变异对神经管畸形的研究意义重大,将揭示神经管畸形发病的新致病风险因素,并提供重要的科学依据促进神经管畸形的产前诊断和防治。目前为止,本研究对D320V、A417V和G545E罕见变异的功能研究还不够深入,在后续的研究中,将进一步通过斑马鱼、小鼠等模式动物,对AXIN2点突变的致病机理进行深入探究。

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经国家新闻出版署批准,《第三军医大学学报》于2022年第1期更名为《陆军军医大学学报》。国内统一刊号CN50-1223/R,ISSN 2097-0927。主管单位为陆军军医大学,主办单位为陆军军医大学教研保障中心。

文章信息

徐雪冰, 李建婷, 包怡华, 郭金, 王芳, 张霆, 杨淑艳
XU Xuebing, LI Jianting, BAO Yihua, GUO Jin, WANG Fang, ZHANG Ting, YANG Shuyan
AXIN2罕见变异与人类神经管畸形的相关性研究
Correlation of rare mutation in AXIN2 with human neural tube defects
陆军军医大学学报, 2023, 45(24): 2503-2511
Journal of Army Medical University, 2023, 45(24): 2503-2511
http://dx.doi.org/10.16016/j.2097-0927.202301093

文章历史

收稿: 2023-01-10
修回: 2023-06-03

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