0
文章快速检索  
高级检索
左旋棉酚通过下调X连锁凋亡抑制蛋白增强表柔比星抑制肝细胞癌的体外作用
蒋文斌1, 孙梁博2, 杜烨湘1, 肖云华3, 黎伯胜1, 闫小晶1, 吴亚冉2, 连继勤2, 何凤田1     
1. 400038 重庆,陆军军医大学(第三军医大学):基础医学院生物化学与分子生物学教研室;
2. 400038 重庆,陆军军医大学(第三军医大学):药学与检验医学系临床生物化学教研室;
3. 400038 重庆,陆军军医大学(第三军医大学):第一附属医院核医学科
[摘要] 目的 探讨左旋棉酚增强表柔比星杀伤肝细胞癌(hepatocellular carcinoma, HCC)细胞的作用及可能机制。方法 将HCC细胞(Hep3B及HuH7)分为溶剂对照组、左旋棉酚处理组、表柔比星处理组、联合用药组、对照siRNA+表柔比星组、沉默X连锁凋亡抑制蛋白(X-linked inhibitor of apoptosis protein, XIAP)+表柔比星处理组、对照质粒+联合用药组、过表达XIAP+联合用药组,采用CCK-8方法检测各组细胞存活情况;流式细胞术检测各组细胞凋亡情况;Western blot检测剪切型聚(腺苷二磷酸-核糖)聚合酶[cleaved poly (ADP-ribose) polymerase, Cle-PARP]水平、XIAP水平及真核起始因子4E (eukaryotic initiation factor 4E, eIF4E)磷酸化水平。结果 与溶剂对照相比,低浓度的左旋棉酚(5 μmol/L)单独处理对HCC细胞存活无明显抑制作用(P>0.05),而将左旋棉酚与表柔比星联合使用后可显著增强表柔比星对HCC细胞的杀伤(P < 0.05)、促进HCC细胞的凋亡及对剪切型PARP的诱导,同时还能抑制表柔比星诱导的XIAP上调及eIF4E磷酸化。此外,表柔比星抑制HCC细胞存活及升高剪切型PARP的能力能被沉默XIAP所增强,而被过表达XIAP所抑制。结论 左旋棉酚可增强表柔比星抑制HCC细胞存活促进细胞凋亡的能力,其机制可能与抑制XIAP上调和eIF4E磷酸化有关,提示左旋棉酚可作为表柔比星治疗HCC的潜在增敏剂。
[关键词] 表柔比星    左旋棉酚    肝细胞癌    X连锁凋亡抑制蛋白    真核起始因子4E    
(-)-Gossypol enhances epirubicin's anti-tumor effects on hepatocellular carcinoma in vitro via down-regulating X-linked inhibitor of apoptosis protein
JIANG Wenbin1, SUN Liangbo2, DU Yexiang1, XIAO Yunhua3, LI Bosheng1, YAN Xiaojing1, WU Yaran2, LIAN Jiqin2, HE Fengtian1     
1. Department of Biochemistry and Molecular Biology, College of Basic Medical Sciences; Army Medical University (Third Military Medical University), Chongqing, 400038, China;
2. Department of Clinical Biochemisty, Faculty of Pharmacy and Laboratory Medicine; Army Medical University (Third Military Medical University), Chongqing, 400038, China;
3. Department of Nuclear Medicine, First Affiliated Hospital; Army Medical University (Third Military Medical University), Chongqing, 400038, China
[Abstract] Objective To investigate mechanism and effect on (-)-gossypol enhancing epirubicin killing hepatocellular carcinoma (HCC) cells. Methods HCC cells (Hep 3B and HuH7) were divided into 8 groups: control, (-)-gossypol, epirubicin, combination, si-control+epirubicin, si-X-linked inhibitor of apoptosis protein (XIAP)+ epirubicin, empty vector+ combination and pEBB-XIAP+ combination groups. Cell viability of each group was detected by CCK-8 assay; Cell apoptosis of each group was detected by flow cytometry and the level of cleavaged PARP, XIAP and eIF4E phosphorylation was detected by Western blot assay. Results Compared with the control group, no major effect was observed on cell viability exposed to (-)-gossypol in 5 μmol/L (P>0.05). Combination of (-)-gossypol and epirubicin significantly enhanced the anti-survival effect on HCC cells (P < 0.05), promoted cells apoptosis, increased the induction of cleavaged PARP, and inhibited XIAP up-regulation and eIF4E phosphorylation induced by epirubicin in HCC cells. Silencing XIAP promoted epirubicin to kill HCC cells and induced PARP cleavaged; Furthermore, XIAP over-expression attenuated epirubicin-induced anti-survival and pro-apoptosis of HCC cells enhanced by (-)-gossypol. Conclusion The combination of (-)-gossypol and epirubicin significantly inhibits HCC cells' survival and promotes cell apoptosis via suppressing epirubicin-induced phosphorylation of eIF4E and up-regulation of XIAP, suggesting that (-)-gossypol holds promise as a sensitizer for epirubicin-based HCC therapy.
[Key words] epirubicin    (-)-gossypol    hepatocellular carcinoma    XIAP    eIF4E    

肝细胞癌(hepatocellular carcinoma, HCC)是世界上常见的人类恶性肿瘤之一,也是全世界癌症死亡的主要原因之一。临床上除手术、放疗、全身化疗等治疗手段外,经动脉插管栓塞化疗(transcatheter arterial chemoembolization, TACE)也是中晚期肝癌治疗的首选方法[2]。作为一种常规的抗肿瘤药,表柔比星(epirubicin, EPI)常被用于肝癌TACE化疗的一线治疗方案[3]。然而,在长期的表柔比星单药治疗过程中,HCC细胞会对表柔比星耐药,从而导致HCC的复发和预后不良[4]。因此,寻找增强表柔比星杀伤HCC效果的策略对于改善HCC基于表柔比星的化疗具有重要的临床意义。

左旋棉酚[(-)-gossypol, (-)-G]是棉籽提取物中的一种有效成分,由于能够抑制精子发生和精子活动,曾在临床上被用作男性避孕药[5]。而近年来,左旋棉酚被证明对肝癌细胞在内的多种癌细胞系具有抗癌作用[6-8]。除单独使用发挥一定抗癌作用外,左旋棉酚还可增敏多种化疗药物的抗癌效应[9-11],而左旋棉酚是否能够增敏表柔比星尚不清楚。因此,本研究将探讨左旋棉酚能否增强表柔比星杀伤HCC细胞的能力及其可能的机制,以期为临床上提升表柔比星对HCC的疗效提供实验依据。

1 材料与方法 1.1 材料

商品化的人来源HCC细胞系Hep3B、HuH7购于中国科学院细胞库,由陆军军医大学基础医学院生物化学与分子生物学教研室保存。0.25%胰酶、DMEM高糖培养基、MEM培养基购于美国HyClone公司;胎牛血清购于江苏依科赛公司;表柔比星购于美国Selleck公司;左旋棉酚购于美国Sigma公司;CCK-8试剂购于美国MedChem Express公司;凋亡检测试剂盒、RIPA裂解液(强)、PMSF购于江苏碧云天公司;PARP、XIAP抗体购于美国Cell Signaling Technology公司;Tubulin抗体购于德国Novus公司;lipofectamine 3000脂质体、山羊抗兔二抗购于美国Thermo公司;PVDF膜购于美国Millipore公司;ECL发光液购于重庆葆光生物公司。

1.2 细胞培养与药物处理

Hep3B细胞用含10% 胎牛血清的MEM培养基培养,HuH7细胞用含10%胎牛血清的DMEM高糖培养基培养,2种细胞均置于5% CO2、37 ℃的条件下静置培养。每2~3天更换1次培养液或进行传代。当重新铺板后的细胞进入到对数生长期时,进行相应的药物处理。药物作用24 h或48 h后,收集细胞进行下一步实验。

1.3 细胞转染

在2个EP管中加入适量等体积无血清培养基,然后向其中一管加入1份体积的质粒/siRNA,向另一管加入2份体积的lipofectamine 3000,各自混匀后静置5 min。混合上述2管液体并在室温下静置20 min,随后将混合液加入待转染细胞中。待细胞培养12 h后,移除含转染试剂的培养基并进行后续处理。pEBB-XIAP及对照空载质粒购于美国Addgene公司;XIAP及对照的siRNA由北京擎科生物公司合成。si-XIAP序列为:正义链5′-AAGUGGUAGUCCUGUUUCAGCUU-3′;反义链5′-AAGCUGAAACAGGACUACCACUU-3′。

1.4 CCK-8检测细胞存活

将3 000个/孔细胞接种在96孔板中培养24 h,随后对细胞进行药物处理。药物处理48 h后,弃去培养基,向每孔加入100 μL含10% CCK-8的相应培养基,然后置于培养箱中4 h。最后测定各孔的光密度值[D(450)],并计算各组细胞的存活率。

1.5 流式细胞术检测细胞凋亡

HCC细胞铺于6孔板中,药物处理24 h,收集细胞并漂洗,用含Annexin V和PI的缓冲液重悬细胞并避光15 min后,采用流式细胞仪进行检测。Annexin V单阳为早期凋亡细胞,Annexin V和PI双阳为晚期凋亡细胞。以各组的早期凋亡细胞和晚期凋亡细胞的总和作为总的细胞凋亡率。

1.6 Western blot检测蛋白表达

用含有PMSF的细胞裂解液提取经药物处理24 h后的各组细胞中的总蛋白,调整蛋白质浓度后变性,经10%丙烯酰胺凝胶进行电泳分离。蛋白在浓缩胶中以80 V的电压进行电泳,当蛋白进入分离胶后以120 V的条件电泳1 h。随后用半干转印仪以恒流1.5 A的条件转膜30 min,将蛋白转印到PVDF膜上,并用5%蛋白封闭液常温封闭1 h。TBST洗膜后,用1 ∶1 000的相应抗体工作液4 ℃下孵育过夜。第2天用TBST洗膜3次后,用1 ∶10 000稀释的山羊抗兔二抗工作液在室温条件下孵育1 h。孵育结束后,再用TBST洗膜3次,最后用ECL发光显影液在化学发光仪中对膜进行曝光显影。

1.7 统计学分析

采用GraphPad Prism 7软件进行分析,结果用x±s表示。两组间比较采用独立样本t检验;采用dunnett对检验多样本间的两两比较进行多重比较。以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 左旋棉酚联合表柔比星能显著抑制HCC细胞的存活

图 1所示,表柔比星以0.25 μmol/L浓度单独处理Hep3B细胞(图 1A)、HuH7细胞(图 1B)48 h,细胞生长受到明显抑制。左旋棉酚单独处理Hep3B细胞(图 1C)、HuH7细胞(图 1D)48 h,在10 μmol/L浓度时,细胞生长明显受到抑制;而在5 μmol/L浓度时,细胞生长虽然受到抑制,但与溶剂对照组相比,该差异无统计学意义。因此,后续实验选择5 μmol/L浓度探讨左旋棉酚对表柔比星抗HCC的增强作用。左旋棉酚(5 μmol/L)和表柔比星(0.25 μmol/L)联合处理HCC细胞48 h会更加显著抑制细胞的存活(图 1EF),与表柔比星组相比,该差异具有统计学意义(P < 0.05)。以上结果提示,左旋棉酚可增强表柔比星杀伤HCC细胞的能力。

A:表柔比星单药处理Hep3B细胞系48 h后存活情况;B:表柔比星单药处理HuH7细胞系48 h后存活情况;C:左旋棉酚单药处理Hep3B细胞系48 h后存活情况;D:左旋棉酚单药处理HuH7细胞系48 h后存活情况;E:联合用药处理Hep3B细胞系48 h后存活情况;F:联合用药处理HuH7细胞系48 h后存活情况  a:P < 0.05,与溶剂对照组(0 μmol/L)比较;b:P < 0.05,与表柔比星处理组比较 图 1 CCK-8检测各处理对HCC细胞存活的影响

2.2 左旋棉酚联合表柔比星能显著诱导HCC细胞的凋亡

流式细胞仪分析结果显示(图 2A):HCC细胞经药物处理24 h后,与溶剂对照组和单独用药组相比,联合处理组的细胞凋亡率明显升高(P < 0.05)。而经Western blot验证发现,左旋棉酚联合表柔比星处理HCC细胞24 h,能显著诱导凋亡相关分子聚(腺苷二磷酸-核糖)聚合酶[poly (ADP-ribose) polymerase, PARP]的剪切(图 2B~D),表明该两药联合可显著促进HCC细胞的凋亡。

1:溶剂对照组;2:左旋棉酚处理组;3:表柔比星处理组;4:联合用药组  a:P < 0.05,与联合用药组比较
A:流式细胞术检测各组细胞凋亡情况;B:Western blot检测PARP蛋白剪切情况  Cle-PARP:剪切型PARP;Tubulin:微管蛋白(内参);C:Hep3B细胞系中剪切型PARP半定量分析;D:HuH7细胞系中剪切型PARP半定量分析
图 2 不同处理方式对HCC细胞凋亡的影响

2.3 左旋棉酚可抑制表柔比星诱导的X连锁凋亡抑制蛋白

进一步探究左旋棉酚增强表柔比星诱导HCC细胞凋亡及抑制细胞生长的可能机制,分析各组药物对HCC细胞内抗凋亡蛋白的影响。结果发现:表柔比星会诱导HCC细胞内抗凋亡蛋白X连锁凋亡抑制蛋白(X-linked inhibitor of apoptosis protein, XIAP)的表达上调;而联合使用左旋棉酚后,表柔比星对XIAP的诱导则会受到抑制(图 3)。

1:溶剂对照组;2:左旋棉酚处理组;3:表柔比星处理组;4:联合用药组  a:P < 0.05,与表柔比星处理组比较
A:XIAP蛋白水平检测;B:Hep3B细胞系XIAP半定量分析;C:HuH7细胞系XIAP半定量分析
图 3 Western blot检测各组别HCC细胞中XIAP蛋白水平的影响

2.4 沉默X连锁凋亡抑制蛋白可促进表柔比星诱导HCC细胞凋亡及抑制细胞增殖

为了探究XIAP对表柔比星抗HCC的影响,利用siRNA干扰技术沉默XIAP后发现:沉默XIAP可显著增强表柔比星对HCC细胞的杀伤作用(图 4AB),同时能显著促进HCC细胞中PARP的剪切(图 4C~E)。

1 : 对照siRNA+表柔比星组; 2:沉默XIAP+表柔比星处理组  a: P < 0.05,与对照siRNA+表柔比星组比较
A: Hep3B细胞系存活情况; B: HuH7细胞系存活情况; C: PARP蛋白剪切情况Cle-PARP: 剪切型PARP; Tubulin: 微管蛋白(内参); D: Hep3B细胞系中剪切型PARP半定量分析; E: HuH7细胞系中剪切型PARP半定量分析
图 4 沉默XIAP对表柔比星杀伤HCC细胞及诱导细胞凋亡的影响

2.5 过表达X连锁凋亡抑制蛋白削弱左旋棉酚对表柔比星杀伤HCC细胞能力的增强作用

分别在HCC细胞中转染XIAP质粒或对照质粒,然后经左旋棉酚和表柔比星联合处理细胞,过表达XIAP显著削弱了左旋棉酚增强表柔比星对HCC细胞杀伤的作用(图 5AB),同时HCC细胞中PARP的剪切也受到了抑制(图 5CE)。以上结果提示,XIAP是左旋棉酚增强表柔比星抗HCC的关键分子。

1 : 对照质粒+联合用药组; 2:过表达XIAP+联合用药组  a: P < 0.05, 与对照质粒+联合用药组比较
A: Hep3B细胞系存活情况; B: HuH7细胞系存活情况; pEBB-XIAP: XIAP的过表达质粒; C: PARP蛋白剪切情况Cle-PARP: 剪切型PARP; Tubulin: 微管蛋白(内参); D: Hep3B细胞系中剪切型PARP半定量分析; E: HuH7细胞系中剪切型PARP半定量分析
图 5 过表达XIAP对左旋棉酚增强表柔比星杀伤HCC细胞及诱导细胞凋亡的影响

2.6 左旋棉酚可抑制表柔比星诱导的真核起始因子4E的磷酸化

表柔比星处理HCC细胞可促进eIF4E的磷酸化,而左旋棉酚可显著减弱表柔比星诱导的eIF4E的磷酸化(图 6A~C)。提示左旋棉酚抑制表柔比星诱导的XIAP上调表达是通过抑制其IRES依赖的翻译起始而实现的。

1:溶剂对照组;2:左旋棉酚处理组;3:表柔比星处理组;4:联合用药组  a:P < 0.05,与表柔比星处理组比较
A:p-eIF4E水平检测  p-eIF4E:磷酸化的真核起始因子4E;Tubulin:微管蛋白(内参);B:Hep3B细胞系p-eIF4E半定量分析C:HuH7细胞系p-eIF4E半定量分析
图 6 Western blot检测各处理对HCC细胞系中eIF4E磷酸化水平的影响

3 讨论

在全球范围内,肝细胞癌导致了大量的癌症相关死亡,尽管早期的HCC可以进行手术切除,但80%的HCC患者术后仍会出现肝内复发[12]。此外,大多数HCC患者诊断时已是晚期,失去了手术切除的机会。近年来研究表明,表柔比星联合TACE化疗是一种有效且安全的治疗手段,尤其对不能切除HCC的患者来说,可以提高生存率[13]。然而,在长期的表柔比星单药治疗过程中,肿瘤细胞对表柔比星会产生耐药性,从而影响治疗的成功率和临床结局[4]。有研究表明,在杀伤多种肿瘤时,表柔比星会诱导肿瘤细胞显著上调抗凋亡蛋白survivin的水平,从而导致肿瘤细胞对表柔比星的敏感性降低[14]。而本研究证实,表柔比星还可诱导HCC细胞中抗凋亡分子XIAP的上调表达,从而引起HCC细胞对表柔比星杀伤作用的抵抗;而沉默XIAP的表达可促进表柔比星对HCC细胞的杀伤作用。这说明XIAP可能在HCC细胞抵抗表柔比星杀伤的过程中起重要作用。

左旋棉酚是一种从棉籽中提取的黄色多酚羟基双萘醛类化合物,虽然最初被用作男性避孕药及治疗女性子宫功能性出血、子宫内膜异位症的药物。但近年研究表明,左旋棉酚对HCC在内的多种癌症细胞系具有抗癌作用,是一种有效的天然抗癌剂,现在正处于2期/3期临床试验阶段。普遍认为,左旋棉酚可作为BH3的类似物,抑制BH3肽与Bcl-2和Bcl-XL蛋白的结合,影响Bcl蛋白的抗凋亡作用,从而诱导凋亡和细胞的生长抑制[8]。然而,除单独使用能发挥一定抗癌作用外,左旋棉酚还可增敏多种化疗药物的抗癌效应。例如,在胶质瘤中,左旋棉酚可抑制hedgehog/Notch通路而增敏三氧化二砷[9];在晚期非小细胞肺癌中,左旋棉酚可抑制脱嘌呤/脱嘧啶核酸内切酶1 (APE1),从而增敏紫杉醇和顺铂的抗肿瘤作用[10];在非小细胞肺癌中,左旋棉酚可抑制YES相关蛋白/含PDZ结合基序的转录共激活因子(YAP/TAZ),从而增敏表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂(EGFR-TKIs)[11]。更重要的是,左旋棉酚可以在结肠癌细胞中抑制包括XIAP在内的多种抗凋亡蛋白的表达[15],这暗示其可能具有增敏表柔比星杀伤HCC细胞的能力。本研究证实,左旋棉酚在低浓度情况下(5 μmol/L)能够抑制表柔比星诱导的XIAP上调表达,增强表柔比星抗HCC细胞的能力。通过过表达XIAP进一步证实,XIAP可阻碍左旋棉酚对表柔比星杀伤HCC细胞的增强作用,这充分说明XIAP表达水平的下调正是左旋棉酚增强表柔比星联合杀伤HCC细胞的关键。那么表柔比星是通过何种方式诱导XIAP的上调表达呢?

有研究证实,XIAP mRNA具有独特的5’-UTR和二级结构,能够以IRES依赖的方式进行蛋白质翻译[16]。而这种IRES依赖的翻译机制又与eIF4E的磷酸化密不可分[17]。本研究发现,左旋棉酚可显著抑制表柔比星诱导的eIF4E磷酸化,这对XIAP的IRES依赖的翻译至关重要,因此推测左旋棉酚是通过抑制表柔比星诱导的p-eIF4E,阻碍了XIAP以IRES依赖的方式进行翻译,从而抑制XIAP的表达上调。

综上所述,左旋棉酚联合表柔比星可以显著促进HCC细胞Hep3B和HuH7的凋亡并抑制细胞的存活,而该途径主要是通过抑制eIF4E的磷酸化和XIAP的上调表达而实现。在表柔比星处理过程中,HCC细胞的eIF4E被磷酸化,随后促进XIAP以IRES依赖的方式持续翻译。而加入左旋棉酚后,eIF4E的磷酸化受到抑制,阻碍了XIAP的持续翻译,从而影响到XIAP抗凋亡作用的发挥,最终促进表柔比星诱导细胞凋亡。本研究为左旋棉酚与表柔比星联用抗HCC以及表柔比星更好地应用于HCC治疗等临床问题提供了理论基础与实验依据。

参考文献
[1]
JEMAL A, WARD E M, JOHNSON C J, et al. Annual report to the nation on the status of cancer, 1975-2014, featuring survival[J]. J Natl Cancer Inst, 2017, 109(9): djx030.
[2]
BAI Z B, QIN Y L, ZHU G Y, et al. Efficacy and safety of epirubicin applied in transcatheter arterial chemoembolization for hepatocellular carcinoma: a meta-analysis[J]. J Cancer Res Ther, 2018, 14(1): 133-138.
[3]
FORNER A, GILABERT M, BRUIX J, et al. Treatment of intermediate-stage hepatocellular carcinoma[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2014, 11(9): 525-535.
[4]
HAN K H, PARK J Y. Chemotherapy for advanced hepatocellular carcinoma[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2008, 23(5): 682-684.
[5]
LU Y Z, LI J, DONG C E, et al. Recent advances in gossypol derivatives and analogs: a chemistry and biology view[J]. Future Med Chem, 2017, 9(11): 1243-1275.
[6]
WANG B, CHEN L F, NI Z H, et al. Hsp90 inhibitor 17-AAG sensitizes Bcl-2 inhibitor (-)-gossypol by suppressing ERK-mediated protective autophagy and Mcl-1 accumulation in hepatocellular carcinoma cells[J]. Exp Cell Res, 2014, 328(2): 379-387.
[7]
WU Y, WEI Y N, YUE W Y, et al. Influence of gossypol acetic acid on the growth of human adenoid cystic carcinoma ACC-M cells and the expression of DNA methyltransferase 1[J]. Genet Mol Res, 2015, 14(4): 13456-13466.
[8]
ZHAO G X, XU L H, PAN H, et al. The BH3-mimetic gossypol and noncytotoxic doses of valproic acid induce apoptosis by suppressing cyclin-A2/Akt/FOXO3a signaling[J]. Oncotarget, 2015, 6(36): 38952-38966.
[9]
LINDER B, WEHLE A, HEHLGANS S, et al. Arsenic trioxide and (-)-gossypol synergistically target glioma stem-like cells via inhibition of hedgehog and Notch signaling[J]. Cancers, 2019, 11(3): 350.
[10]
WANG Y X, LI X M, ZHANG L, et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled study of B-cell lymphoma 2 homology 3 mimetic gossypol combined with docetaxel and cisplatin for advanced non-small cell lung cancer with high expression of apurinic/apyrimidinic endonuclease 1[J]. Invest New Drugs, 2020, 38(6): 1862-1871.
[11]
XU J, ZHU G Y, CAO D, et al. Gossypol overcomes EGFR-TKIs resistance in non-small cell lung cancer cells by targeting YAP/TAZ and EGFR L858R/T790M[J]. Biomed Pharmacother, 2019, 115: 108860.
[12]
BRUIX J, GORES G J, MAZZAFERRO V. Hepatocellular carcinoma: clinical frontiers and perspectives[J]. Gut, 2014, 63(5): 844-855.
[13]
LIU Z H, SUN J X, FENG J K, et al. Prognostic comparison between liver resection and transcatheter arterial chemoembolization for hepatocellular carcinoma patients with bile duct tumor thrombus: a propensity-score matching analysis[J]. Front Oncol, 2022, 12: 835559.
[14]
HAMY A S, BIECHE I, LEHMANN-CHE J, et al. BIRC5 (survivin): a pejorative prognostic marker in stage Ⅱ/Ⅲ breast cancer with no response to neoadjuvant chemotherapy[J]. Breast Cancer Res Treat, 2016, 159(3): 499-511.
[15]
SUNG B, RAVINDRAN J, PRASAD S, et al. Gossypol induces death receptor-5 through activation of ROS-ERK-CHOP pathway and sensitizes colon cancer cells to TRAIL[J]. J Biol Chem, 2016, 291(32): 16923.
[16]
THAKOR N, SMITH M D, ROBERTS L, et al. Cellular mRNA recruits the ribosome via eIF3-PABP bridge to initiate internal translation[J]. RNA Biol, 2017, 14(5): 553-567.
[17]
LI X Z, LI B, NI Z H, et al. Metformin synergizes with BCL-XL/BCL-2 inhibitor ABT-263 to induce apoptosis specifically in p53-defective cancer cells[J]. Mol Cancer Ther, 2017, 16(9): 1806-1818.
经国家新闻出版署批准,《第三军医大学学报》于2022年第1期更名为《陆军军医大学学报》。国内统一刊号CN50-1223/R,ISSN 2097-0927。主管单位为陆军军医大学,主办单位为陆军军医大学教研保障中心。

文章信息

蒋文斌, 孙梁博, 杜烨湘, 肖云华, 黎伯胜, 闫小晶, 吴亚冉, 连继勤, 何凤田
JIANG Wenbin, SUN Liangbo, DU Yexiang, XIAO Yunhua, LI Bosheng, YAN Xiaojing, WU Yaran, LIAN Jiqin, HE Fengtian
左旋棉酚通过下调X连锁凋亡抑制蛋白增强表柔比星抑制肝细胞癌的体外作用
(-)-Gossypol enhances epirubicin's anti-tumor effects on hepatocellular carcinoma in vitro via down-regulating X-linked inhibitor of apoptosis protein
陆军军医大学学报, 2022, 44(16): 1599-1605
Journal of Army Medical University, 2022, 44(16): 1599-1605
http://dx.doi.org/10.16016/j.2097-0927.202201161

文章历史

收稿: 2022-01-19
修回: 2022-04-06

相关文章

工作空间