0
文章快速检索  
高级检索
长沙市122例输入性恶性疟原虫pfpm2基因拷贝数变异的分析
田斌1,2, 申晓君2, 廖瑜2, 曾庆仁1     
1. 410013 长沙,中南大学湘雅医学院医学寄生虫学系;
2. 410005 长沙,长沙市疾病预防控制中心
[摘要] 目的 了解长沙市近4年来输入性恶性疟原虫(Plasmodium falciparum, P.f)的血浆蛋白酶基因2(plasmodium falciparum plasmepsin 2, pfpm2)基因拷贝数变异(copy number variations, CNVs)情况,用以预测输入性抗药性虫株出现风险。方法 收集长沙市输入性疟疾定点医疗机构在2016-2019年收治的单一感染P.f患者外周静脉血制作的干血斑样本122份,采用荧光实时定量PCR检测P.fpfpm2基因CNVs,以P.fpfpm2基因CNVs增加参数来分析抗药虫株在不同输入年份间和不同输出国间产生的可能性。结果 来自25个输入国122例P.f患者的临床虫株pfpm2基因CNVs值为1.222±0.422,显著高于标准虫株3D7 CNVs值(1.007±0.023,P < 0.001)。在122个临床虫株中,有23个pfpm2基因的CNVs值>1.5,分别来源于尼日利亚(6/15)、刚果(5/18)、科特迪瓦(2/5)、塞拉利昂(2/8)等12个国家的恶性疟病例。在2016-2019年输入的病例数中,pfpm2基因CNVs值>1.5的临床虫株数在各年度输入总数中所占比率分别为13.2% (5/38)、16.0% (4/25)、22.9% (8/35)和25.0% (6/24),各年度总虫株数的CNVs值分别为1.061±0.323、1.184±0.247、1.292±0.571和1.414±0.360。经t检验,除2017与2018年、2018与2019年之间的差异无统计学意义外,其余年度间比较差异均有统计学意义(P < 0.05)。来源于尼日利亚、科特迪瓦、坦桑尼亚和布隆迪4个国家的临床虫株CNVs均值显著高于总体(122个病例来源)均值(P < 0.05)。结论 长沙市输入性P.fpfpm2基因CNVs值逐年提高,提示抗药性虫株有发展趋势;某些来源于西非国家的临床虫株可能产生了抗药性,提示我国疟疾防控机构要注意现行抗疟药对某些输入性恶性疟患者的治疗效果可能不佳。
[关键词] 疟疾    恶性疟原虫    plasmepsin2基因    拷贝数变异    抗性虫株    耐药性    
Analysis of copy number variation in pfpm2 gene of Plasmodium falciparum in 122 imported cases in Changsha from 2016 to 2019
TIAN Bin1,2, SHEN Xiaojun2, LIAO Yu2, ZENG Qingren1     
1. Department of Parasitology, Xiangya School of Medicine, Central South University, Changsha, Hunan Province, 410013;
2. Changsha Center for Disease Control and Prevention, Changsha, Hunan Province, 410005, China
[Abstract] Objective To analyze copy number variations (CNVs) of pfpm2 gene in 122 imported cases of Palciparum falciparum (P.f) infection in Changsha from 2016 to 2019 for predicting the risk of imported drug-resistant P.f strains in Changsha. Methods We collected dried blood spot samples of anticoagulated peripheral venous blood from 122 patients with a single infection of P.f, who were treated in designated medical facilities for malaria in Changsha in the years of 2016-2019. For each specimen, the CNVs of pfpm2 gene were detected in parallel with the standard strain 3D7 using real-time PCR. The CNVs values of the samples were compared across the years and also among different source countries of the cases. Results We analyzed a total of 122 P.f strains isolated from imported cases from 25 countries. The mean value of CNVs of pfpm2 gene in the 122 strains was significantly higher than that of the standard strain 3D7 (1.222±0.422 vs 1.007±0.023, P < 0.001). There were 23 Strains Whose CNVs Values of pfpm2 gene were higher than 1.5, which were imported from 12 countries including Nigeria (6/15), Congo (5/18), Cote d'Ivoire (2/5) and Sierra Leone (2/8). The percentage of strains with pfpm2 CNVs >1.5 was 13.2% (5/38) in 2016, 16.0% (4/25) in 2017, 22.9% (8/35) in 2018 and 25.0% (6/24) in 2019 respectively. The mean value of pfpm2 gene CNVs was 1.061±0.323 in 2016, 1.184±0.247 in 2017, 1.292±0.571 in 2018 and 1.414±0.360 in 2019, showing significant differences across the years except the years of 2017 and 2018 or 2018 and 2019 (P < 0.05, P < 0.001). The mean values of pfpm2 gene CNVs of the strains from Nigeria, Cote d'Ivoire, Tanzania and Burundi were significantly higher than the overall mean of the 122 strains (P < 0.05). Conclusion The CNVs of pfpm2 gene of P.f imported from African countries to Changsha are increased year by year, suggesting an increase in the risk of drug-resistant P.f strains in Changsha. Some clinical P.f strains from West Africa may have developed drug resistance, and thus may show poor response to current antimalarial drugs.
[Key words] malaria    Plasmodium falciparum    plasmepsin 2 gene    copy number variations    resistant strains    drug resistance    

疟疾(malaria)是由疟原虫(Plasmodium)感染引起的一种在热带和亚热带国家严重流行的主要虫媒传染病,尤其是恶性疟原虫(Plasmodium falciparum, P.f)对人类健康危害最大。近20年来,因有效抗疟药物的广泛应用,全球疟疾控制取得了卓越成效。但是,抗疟药物的抗性虫株播散已成为全球终止疟疾行动的绊脚石,成为人类对抗疟疾行动的重要挑战[1-2]。疟原虫的遗传因素,如单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphisms, SNPs)和拷贝数变异(copy number variations,CNVs)已显示在抗疟药物抗性形成中发挥了作用[3]。为适应生存环境的变化,真核细胞基因删减或重复某基因成为CNVs产生的机会,而且是SNPs发生概率的数千倍[4]。恶性疟原虫血浆蛋白酶基因2(plasmodium falciparum plasmepsin 2,pfpm2)拷贝数增加是P.f基因CNVs的一种,并与P.f对哌喹敏感性降低和对双氢青蒿素哌喹失效密切相关。WHO也推荐使用pfpm2基因CNVs作为跟踪P.f对哌喹或双氢青蒿素哌喹药物抗性发生和播散的风险评估指标[3, 5]。本研究旨在检测和分析长沙市2016-2019年输入性P.f患者的临床种株pfpm2基因CNVs情况,用以评估输入性抗药虫株可能存在的风险。

1 材料与方法 1.1 标本来源

2016年1月5日至2019年12月30日,收集在长沙市输入性疟疾定点医疗机构收治的输入性恶性疟疾患者外周静脉抗凝全血122份,并将收集的全血标本于48 h内制作滤纸血膜标本待干备检。每份收集的标本在进行pfpm2基因CNVs检测前均经荧光实时定量PCR鉴定为P.f单一虫种感染,且采集该样本的患者在采集前未服用任何抗疟药物。标本来源患者的基本情况见表 1。本研究经长沙市疾病预防控制中心伦理委员会审查通过(2019年7月),患者在标本采集前均签署了知情同意书。

表 1 长沙市2016-2019年122例输入性单一恶性疟原虫感染患者的基本情况
患者的类型、来源、流行病学史及既往史 例数 构成比(%)
性别
  男性 119 97.5
  女性 3 2.5
国籍
  中国国籍 116 95.1
  非中国国籍 6 4.9
发病前1个月内是否有境外居留史
  是 110 90.2
  否 9 7.4
  不详 3 2.5
发病前3个月内是否有境外居留史
  是 117 95.9
  否 2 1.6
  不详 3 2.5
既往治疗疟疾用药情况
  青蒿素类复方片剂 65 53.3
  青蒿素类注射剂 11 9.0
  氯喹和伯氨喹 9 7.4
其他 18 14.8
无治疗史 19 15.5

1.2 标本收集及处理

所收集的血样本,均经静脉采血于抗凝管后滴在蛋白保存卡(GE Whatman 903)上制作干血斑,常温保存备检。干血斑的核酸提取采用QIAamp DNA Microbiome Kit(货号:1080890)试剂盒与其提供的全血标本处理程序处理。疟原虫检测及虫种分型采用的试剂为江苏硕世生物科技有限公司生产的疟原虫核酸检测试剂盒及疟原虫分型试剂盒。平行对照检测的恶性疟原虫标准株(3D7株,原虫密度为10 000 parasites/μL)由中国CDC寄生虫病预防控制所赠送,该虫株为抗疟药物敏感虫株且为pfpm2单拷贝虫株。

1.3 检测方法及质量控制

检测pfpm2基因拷贝数的方法参考柬埔寨巴斯德研究所提供的检测程序文件[6]pfpm2基因扩增引物为pfpm2-正向引物: 5′-TGGTGATGCAGAAGTTGGAG-3′和pfpm2-反向引物:5′-TGGGACCCATAAATTAGCAGA-3′;参照基因扩增引物为pftub-正向引物: 5′-TGATGTGCGCAAGTGATCC-3′和pftub-反向引物: 5′-TCCTTTGTGGACATTCTTCCTC-3′。2对引物的扩增产物大小均为79 bp。扩增体系使用Applied BiosystemsTM PowerUpTM SYBRTM Green预混液(货号A25780)。仪器选用ABI7500Fast System检测系统。pfpm2基因CNVs值通过荧光实时定量PCR系统基于2-ΔΔCt构建的基因CNVs分析程序对检测数据进行分析获得。

标准株3D7株每次检测复测6孔,每个患者样本复测3孔。当pfpm2基因扩增Ct值≥33或者所有检测样本pfpm2基因CNVs估算值小于0.5时,则该检测无效,另外,pfpm2和参照基因pftub热溶解曲线峰值温度在对应的温度时检测结果方可使用。以检测程序文件提供的划分依据[6-7],设pfpm2基因CNVs的截断值为1.5。当某临床虫株pfpm2基因检测的CNVs>1.5时被推断为具抗药性风险。当某一输出国的临床虫株pfpm2基因CNVs均值显著高于所有临床虫株pfpm2基因CNVs总体均值时,被推测为该国输出的虫株可能出现了抗药性风险。

1.4 统计学分析

从检测设备分析软件导出检测数据的Excel文件后,再导入SPSS 18.0统计软件,计数资料采用构成比进行统计描述,计量资料采用x±s进行统计描述。组间比较先行方差齐性检验,若方差齐则采用一般t检验,若方差不齐则采用Cochran and Cox近似t检验。P < 0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 2016-2019年长沙市输入性恶性疟原虫pfpm2基因CNVs情况

表 2显示:122个临床标本的pfpm2基因CNVs均值显著高于标准虫株CNVs(P < 0.001);在122个临床标本中,检测的pfpm2基因CNVs≤1.5的临床虫株99个,占总样本数的81.1%;检测pfpm2基因CNVs>1.5的临床虫株23个,占总样本数的18.9%。对各年度输入样本检测结果分析(表 3)显示:2016-2019年的pfpm2基因CNVs值分别为1.061±0.323、1.184±0.247、1.292±0.571和1.414±0.360。经t检验,2017年比2016年(P=0.004)、2018年比2016年(P < 0.001)、2019年比2017年(P < 0.001)、2019年比2016年(P < 0.001)的pfpm2基因CNVs均值增加,且差异具有统计学意义。但2018年与2017年比较,以及2019年与2018年比较,pfpm2基因CNVs值差异均无统计学意义。

表 2 长沙市122例患者输入恶性疟原虫pfpm2基因CNVs检测结果
分类 样本数 pfpm2基因CNVs值(x±s) pfpm2基因CNVs区间值
标准株 5 1.007±0.023 0.969~1.045
CNVs≤1.5 99 1.070±0.157b 0.757~1.476
CNVs >1.5 23 1.876±0.562 1.505~3.954
合计 122 1.222±0.422a 0.757~3.954
a:P < 0.001,与标准株比较;b:P < 0.001,与CNVs>1.5比较

表 3 长沙市2016-2019年输入恶性疟原虫pfpm2基因CNVs检测结果比较
年份 CNVs值≤1.5 CNVs值>1.5 检测样本 pfpm2基因CNVs值(x±s)
患者数 构成比(%) 患者数 构成比(%)
2016 33 86.8 5 13.2 38 1.061±0.323
2017 21 84.0 4 16.0 25 1.184±0.247ac
2018 27 77.1 8 22.9 35 1.292±0.571b
2019 18 75.0 6 25.0 24 1.414±0.360b
合计 99 81.1 23 18.9 122 1.222±0.422
a:P=0.004,b:P < 0.001,与2016年比较;c:P < 0.001,与2019年比较

2.2 各输出国虫株CNVs检测结果与总体均值的比较

长沙市输入性P.f虫株来源于25个国家,各国输出虫株pfpm2基因CNVs检测结果(表 4)显示:pfpm2基因CNVs值>1.5的虫株来源于尼日利亚、科特迪瓦、安哥拉、刚果民主共和国、贝宁、几内亚、坦桑尼亚、布隆迪等12个非洲国家输出的部分样本中。经t检验或Cochran and Cox近似t检验,尼日利亚、科特迪瓦、坦桑尼亚和布隆迪4个国家来源的虫株pfpm2基因CNVs均值均显著高于总体样本检测的均值。

表 4 各输出国输入性恶性疟原虫pfpm2基因CNVs值与总体均值比较
患者输出国 CNVs≤1.5 CNVs>1.5 pfpm2基因CNVs 与总体值比较
患者数 构成比(%) 患者数 构成比(%) 患者数 x±s t P
尼日利亚 9 60.0 6 40.0 15 1.429±0.656* 2.065 0.044
科特迪瓦 3 60.0 2 40.0 5 1.521±0.777* 2.578 0.010
加纳 8 88.9 1 11.1 9 1.085±0.246* 2.623 0.012
马里 4 80.0 1 20.0 5 1.107±0.292 1.045 0.297
安哥拉 5 83.3 1 16.7 6 1.231±0.215* 0.163 0.872
刚果民主共和国 13 72.2 5 27.8 18 1.253±0.353 0.514 0.608
刚果共和国 13 92.9 1 7.1 14 1.198±0.497 0.375 0.708
塞拉利昂 6 75.0 2 25.0 8 1.137±0.305 0.968 0.333
喀麦隆 7 87.5 1 12.5 8 1.175±0.314 0.536 0.593
贝宁 1 50.0 1 50.0 2 1.371±0.553 0.854 0.394
几内亚 1 50.0 1 50.0 2 1.497±0.362 1.586 0.114
坦桑尼亚 0 0 1 100.0 1 1.510±0.043* 8.672 0.001
埃塞俄比亚 4 100.0 0 0 4 1.101±0.199* 3.889 0.001
巴基斯坦 2 100.0 0 0 2 1.101±0.076* 3.602 0.001
巴布亚新几内亚 1 100.0 0 0 1 0.824±0.013* 17.081 0.001
马维拉 1 100.0 0 0 1 0.801±0.039* 18.069 0.001
加蓬 3 100.0 0 0 3 1.124±0.049* 3.571 0.001
肯尼亚 1 100.0 0 0 1 1.073±0.044* 4.429 0.004
莫桑比克 2 100.0 0 0 2 1.103±0.015* 5.198 0.001
利比里亚 2 100.0 0 0 2 1.029±0.084* 4.733 0.001
赤道几内亚 5 100.0 0 0 5 1.192±0.125* 0.767 0.449
乌干达 4 100.0 0 0 4 1.170±0.108* 1.362 0.186
马达加斯加 2 100.0 0 0 2 1.129±0.243 0.538 0.591
布隆迪 1 100.0 0 0 1 1.329±0.033* 3.671 0.004
布基纳法索 1 100.0 0 0 1 1.091±0.023 5.088 0.001
①表中各国样本检测的pfpm2基因CNVs值的统计包含了对每个样本平行检测3孔的数据,因此对检测1~2个样本的国家也出现了±s被纳入统计学分析;②各输出国虫株pfpm2基因CNVs值与总体值(1.222±0.422)进行比较,*为方差不齐采用Cochran and Cox近似t检验,反之采用一般t检验;③▲为该国来源的虫株pfpm2基因CNVs值比总体值明显增高;●为该国临床虫株pfpm2基因CNVs值比总体值明显下降

3 讨论

疟原虫基因拷贝数CNVs增加是疟原虫虫株发生抗药性的重要分子机制之一。有研究显示:约6%的P.f抗药性出现与其相关基因CNVs变化相关[7]。WITKOWSKI等[6]在柬埔寨做了一项研究,采用Illumina Pair-Read测序法检测基因变异,结果发现用pfpm2基因CNVs的增加来预测哌喹或双氢青蒿素哌喹清除P.f失败或清除时间延迟的敏感性为0.94(95% CI: 0.88~0.98),特异性为0.77(95%CI: 0.74~0.81),由此认为pfpm2基因CNVs增加可以作为P.f对哌喹或双氢青蒿素哌喹药物抗性的分子标记。另外,BOPP等[5]体外培养P.f耐受哌喹或双氢青蒿素哌喹种株的全基因组测序结果也支持pfpm2基因CNVs的增加作为该类药物抗性分子标记的观点。但是,在非洲采用pfpm2基因CNVs增加作为P.f对哌喹或双氢青蒿素哌喹抗性分子标记的研究却不完全支持上述研究结论。有研究认为pfpm2基因CNVs的增加不能作为独立因子来评价P.f对哌喹或双氢青蒿素哌喹的抗性,但可推测该P.f虫株对该类药物抗性有一定相关性[8-9]

本研究收集了长沙市2016-2019年输入的122例P.f患者治疗前的全血标本,通过对其作pfpm2基因CNVs的检测结果分析发现:pfpm2基因CNVs >1.5的临床种株占18.9%(23/122);从2016年的13.2%(5/38)到2017年的16.0%(4/25),再从2018年的22.9%(8/35)上升到2019年的25.0%(6/24),并且各年度pfpm2基因CNVs均值也呈现出逐年上升的趋势。经t检验,本研究分析的输入病例中,次年输入病例pfpm2基因CNVs均值普遍高于前1年输入病例,但只有2019和2018年比较差异具有统计学意义。如果间隔1年以上进行均值比较,如2018与2016年相比、2019与2017年相比、2019与2016年相比,差异都具有统计学意义。

为探讨pfpm2基因CNVs值在提示药物治疗输入性恶性疟敏感性的作用,本研究回顾了23例pfpm2基因CNVs>1.5患者和其余患者的既往疟疾病史和用药情况、当次患病的治疗情况。上述23例恶性疟患者中,有21例(91.3%, 21/23)患者自述具有抗疟治疗史,有16例(69.6%, 16/23)患者服用过自行购买或由其雇主提供的药名不祥的抗疟药物,有9例(39.1%, 9/23)患者曾服用青蒿素类复方片剂进行抗疟治疗。在99例pfpm2基因CNVs≤1.5的患者中,有82例(82.8%, 82/99)患者自述具有抗疟治疗史,仅有2例(2.0%, 2/99)患者曾服用过药名不祥的抗疟药物,有56例(56.6%, 56/99)患者曾服用过青蒿素类复方片剂进行抗疟治疗。国内极少使用哌喹或双氢青蒿素哌喹对恶性疟患者进行治疗,因此无法通过观测患者体内原虫清除时间来直接评价pfpm2基因CNVs值变异与哌喹或双氢青蒿素哌喹药物抗性的关系,但本研究还是统计了122例患者的用药时间,希望从侧面反映原虫的抗药性。pfpm2基因CNVs≤1.5的99例患者用药天数为(3.46±1.14)d,CNVs>1.5患者的用药天数为(4.26±1.39)d。从上述既往史和治疗时间延长来看,pfpm2基因CNVs增加虫株具备恶性疟原虫药物抗性虫株的理论基础和治疗表现。

有研究者认为:无意义的基因CNVs增加对于细胞自身的复制来说会造成因酶表达水平变化而引起的代谢增加,也会因此很难适应环境,使之在长期传代过程中逐渐消失[7]。发生在P.f群体的pfpm2基因CNVs增加的种株比例逐年提高的趋势,虽不能作为P.f虫株对哌喹或双氢青蒿素哌喹抗性蔓延或传播的直接证据,但可以作为一个与P.f对上述药物抗性的分子变异相关的标志物,对定点医疗机构的患者治疗和防控机构的防控具有警示意义。另外,从生物进化的角度看,pfpm2基因CNVs增加对于P.f来说不是负担而是有益的基因变异。如果该变化与恶性疟对哌喹或双氢青蒿素哌喹抗性相关,那么pfpm2基因CNVs增加的P.f临床虫株比例的逐年提升是否意味着P.f对该类药物抗性的传播,值得进一步证实。

本研究122例恶性疟患者主要来自非洲,少数来自亚洲和大洋洲,涉及25个输出国家。经对患者标本pfpm2基因CNVs检测发现,在非洲大陆12个国家出现了pfpm2基因CNVs增加的临床虫株。依据地理位置主要集中在西非南部沿海区域和非洲中部区域,而非洲北部、南部及东部(坦桑尼亚除外)无分布。将各输出国虫株pfpm2基因CNVs与总体均值进行比较发现:长沙市输入性恶性疟原虫CNVs增加主要来自于尼日利亚、科特迪瓦、坦桑尼亚和布隆迪等国家。LEROY等[10]在对P.f抗药性分子标记检测过程中发现,在非洲地区经常观察到pfpm2基因CNVs增加的现象,尤其是在布基纳法索和乌干达pfpm2基因CNVs增加种株比例高达30%以上。2019年,AMAMBUA-NGWA等[11]研究15个非洲国家共24个疟疾流行区的2 263个恶性疟临床种株基因SNPs,发现P.f基因出现SNPs的区域集中在西非南部、中非和东部部分国家。这些恶性疟原虫SNPs分布的区域与本研究pfpm2基因CNVs区域分布极为相似,说明pfpm2基因CNVs的播散路径与P.f基因SNPs播散模式相似。

综上所述,长沙市输入性P.f临床虫株pfpm2基因CNVs有逐年增加现象,其增加的临床种株主要来源于尼日利亚、科特迪瓦、坦桑尼亚和布隆迪等非洲国家,此结果与非洲主要输出国P.f临床虫株的SNPs播散状况极为相似。提示尼日利亚、科特迪瓦、坦桑尼亚和布隆迪等国家输入的P.f患者存在与抗药性相关的临床种株,并呈逐年增高趋势。可能存在因药物抗性造成的原虫清除失败或清除时间延迟,原虫可在患者体内发育成具有传播能力的有性阶段而加大输入再传播风险,值得疟疾防治机构关注。

参考文献
[1]
ROUT S, MAHAPATRA R K. Plasmodium falciparum: Multidrug resistance[J]. Chem Biol Drug Des, 2019, 93(5): 737-759. DOI:10.1111/cbdd.13484
[2]
HALDAR K, BHATTACHARJEE S, SAFEUKUI I. Drug resistance in plasmodium[J]. Nat Rev Microbiol, 2018, 16(3): 156-170. DOI:10.1038/nrmicro.2017.161
[3]
QIDWAI T. Exploration of copy number variation in genes related to anti-malarial drug resistance in Plasmodium falciparum[J]. Gene, 2020, 736: 144414. DOI:10.1016/j.gene.2020.144414
[4]
BEGHAIN J, LANGLOIS A C, LEGRAND E, et al. Plasmodium copy number variation scan: gene copy numbers evaluation in haploid genomes[J]. Malar J, 2016, 15: 206. DOI:10.1186/s12936-016-1258-x
[5]
BOPP S, MAGISTRADO P, WONG W, et al. Plasmepsin Ⅱ-Ⅲ copy number accounts for bimodal piperaquine resistance among Cambodian Plasmodium falciparum[J]. Nat Commun, 2018, 9(1): 1769. DOI:10.1038/s41467-018-04104-z
[6]
WITKOWSKI B, DURU V, KHIM N, et al. A surrogate marker of piperaquine-resistant Plasmodium falciparum malaria: a phenotype-genotype association study[J]. Lancet Infect Dis, 2017, 17(2): 174-183. DOI:10.1016/S1473-3099(16)30415-7
[7]
HUCKABY A C, GRANUM C S, CAREY M A, et al. Complex DNA structures trigger copy number variation across the Plasmodium falciparum genome[J]. Nucleic Acids Res, 2019, 47(4): 1615-1627. DOI:10.1093/nar/gky1268
[8]
FOGUIM TSOMBENG F, GENDROT M, ROBERT M G, et al. Are k13 and plasmepsin Ⅱ genes, involved in Plasmodium falciparum resistance to artemisinin derivatives and piperaquine in Southeast Asia, reliable to monitor resistance surveillance in Africa?[J]. Malar J, 2019, 18(1): 285. DOI:10.1186/s12936-019-2916-6
[9]
LOESBANLUECHAI D, KOTANAN N, DE COZAR C, et al. Overexpression of plasmepsin Ⅱ and plasmepsin Ⅲ does not directly cause reduction in Plasmodium falciparum sensitivity to artesunate, chloroquine and piperaquine[J]. Int J Parasitol Drugs Drug Resist, 2019, 9: 16-22. DOI:10.1016/j.ijpddr.2018.11.004
[10]
LEROY D, MACINTYRE F, ADOKE Y, et al. African isolates show a high proportion of multiple copies of the Plasmodium falciparum plasmepsin-2 gene, a piperaquine resistance marker[J]. Malaria J, 2019, 18(1): 111-126.
[11]
AMAMBUA-NGWA A, AMENGA-ETEGO L, KAMAU E, et al. Major subpopulations of Plasmodium falciparum in sub-Saharan Africa[J]. Science, 2019, 365(6455): 813-816. DOI:10.1126/science.aav5427
http://dx.doi.org/10.16016/j.1000-5404.202005173
中国人民解放军总政治部、国家科技部及国家新闻出版署批准,
由第三军医大学主管、主办

文章信息

田斌, 申晓君, 廖瑜, 曾庆仁
TIAN Bin, SHEN Xiaojun, LIAO Yu, ZENG Qingren
长沙市122例输入性恶性疟原虫pfpm2基因拷贝数变异的分析
Analysis of copy number variation in pfpm2 gene of Plasmodium falciparum in 122 imported cases in Changsha from 2016 to 2019
第三军医大学学报, 2020, 42(20): 2012-2017
Journal of Third Military Medical University, 2020, 42(20): 2012-2017
http://dx.doi.org/10.16016/j.1000-5404.202005173

文章历史

收稿: 2020-07-26
修回: 2020-07-29

相关文章

工作空间