0
文章快速检索  
高级检索
西青果丙酮及水提取物体外抗氧化活性初步研究
赵鸿燕, 刘芳, 谢永红, 戴青, 刘松青     
400038 重庆,第三军医大学西南医院药剂科
[摘要] 目的 探讨西青果丙酮提取物和水提取物在3种评价体系下的体外抗氧化活性。 方法 采用福林酚比色法测定西青果丙酮提取物和水提取物的总酚含量;利用清除1, 1-二苯基-2-苦肼基自由基 (DPPH·)、2, 2-联氮基-双-(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸) 二铵盐自由基 (ABTS+·) 评价法、还原法测定西青果两种溶剂提取物的抗氧化活性。 结果 西青果丙酮提取物和水提取物总酚含量分别为 (622.19±1.35) mg/g和 (457.43±0.96) mg/g;两种溶剂提取物均表现出良好的抗氧化活性,对DPPH、ABTS自由基清除率的IC50值分别为8.427、19.575 μg/mL和20.273、33.064 μg/mL;对Fe3+均有一定的还原能力,其结果与浓度呈良好的量效关系,丙酮提取物还原效果最为明显。 结论 西青果丙酮提取物和水提取物具有较强的抗氧化活性。
[关键词] 西青果     DPPH     ABTS     抗氧化活性     总酚含量    
Antioxidant activities of acetone and aqueous extracts from Terminalia chebula Retz. in vitro
Zhao Hongyan , Liu Fang , Xie Yonghong , Dai Qing , Liu Songqing     
Department of Pharmacy, Southwest Hospital, Third Military Medical University, Chongqing, 400038, China
Supported by the Application and Development Project of Chongqing Science and Technology Commission (CSTC2014yykfA110023)
Corresponding author: Liu Songqing, E-mail:songqingliu@hotmail.com
[Abstract] Objective To investigate in vitro antioxidant activities of acetone and aqueous extracts from Terminalia chebula Retz. by 3 evaluation systems. Methods Total phenolic contents of the acetone extract and aqueous extract from Terminalia chebula Retz. were determined by Folin-Ciocalteu reagent. Using 2, 2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH·) and 2, 2-azinobis-(3-ethylbenzothiazolin-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS+·) radical scavenging assay and reducing power to evaluate the in vitro antioxidant activities of the acetone extract and aqueous extract from Terminalia chebula Retz.. Results The total phenolic content was 622.19±1.35 and 457.43±0.96 mg/g, respectively. The acetone extract and aqueous extract showed strong antioxidant activity. In the experiment of DPPH radical scavenging assay, the IC50 values of the acetone extract and aqueous extract from Terminalia chebula Retz. were 8.427 and 19.575 μg/mL respectively. ABTS radical scavenging assay showed their IC50 values were 20.273 and 33.064 μg/mL, respectively. All of the extracts had deoxidization ability of Fe3+, and the Results showed a good dose-concentration relationship. Acetone extract showed strong reduction power. Conclusion The acetone extract and aqueous extract of Terminalia chebula Retz. exhibit better in vitro antioxidant capacity.
[Key words] Terminalia chebula Retz.     2, 2-diphenyl-1-picrylhydrazyl     2, 2-azinobis-(3-ethylbenzothiazolin-6-sulfonic acid) diammonium salt     antioxidant activity     total phenolic content    

西青果,又名藏青果,为使君子科植物诃子 (Terminalia chebula Retz.) 的干燥幼果,分布于我国广东、广西、云南等地区。西青果具有清热生津、解毒的作用,临床上用于阴虚白喉[1]。有研究表明,西青果与其成熟果实诃子所含化学成分种类极为相似,主要含有鞣质类、酚酸类、三萜类等化合物[2],这些成分具有抗氧化、抗炎、抗菌等多种生物活性[3]。Zhao等[4]发现西青果酚酸成分诃子宁可显著降低胶原蛋白诱导的关节炎模型 (CIA) 小鼠体内炎症因子TNF-α和IL-6的表达,具有抗炎活性。Kusirisin等[5]研究发现诃子具有较好的抗氧化应激作用和降血糖作用,且诃子所含的多酚类化合物和黄酮类化合物对抗氧化和降血糖作用贡献最大。Sarkar等[6]的研究证实了诃子70%甲醇提取物能够减轻小鼠铁诱导的肝毒性损伤程度,具有还原能力和铁离子螯合能力。

从以上研究可以推测,西青果可能是一种有效的抗氧化中药,但采用不同提取方法获得的提取物酚酸类含量及抗氧化效果尚不清楚。本研究以产自广西的西青果为研究对象,分别以丙酮、水作为提取溶剂进行提取,采用福林酚比色法测定总酚含量和3种体外抗氧化方法 (DPPH自由基清除方法、ABTS自由基清除方法、还原法) 综合评价两种提取物的体外抗氧化活性,以期为从西青果中提取天然的抗氧化活性物质提供理论依据。

1 材料与方法 1.1 药品与试剂

原材料西青果购自重庆慧远药业有限公司 (批号150801),产地广西,经鉴定为使君子科植物诃子的干燥幼果;Folin-Ciocalteu试剂购于Sigma-Aldrich公司,批号101625012;1, 1-二苯基-2-苦肼基 (DPPH) 购自Sigma-Aldric公司,批号101585784;2, 2-联氮基-双-(3-乙基-苯并噻唑啉-6-磺酸) 二胺盐 (ABTS) 购自上海华蓝化学科技有限公司,批号30391670;抗坏血酸 (Vc) 购自重庆东方试剂厂,纯度≥99.8%;没食子酸对照品,购自大连美仑生物技术有限公司,纯度≥98%;无水Na2CO3、K3[Fe (CN)6]、FeCl3、K2S2O8、NaH2PO4、Na2HPO4、三氯乙酸、丙酮、乙醇及甲醇均为国产分析纯。

1.2 实验仪器

HA221-50-06-C型超临界萃取仪 (江苏南通华安超临界流体萃取有限公司);UV-2450型紫外分光光度计 (日本岛津);R-210型旋转蒸发仪 (瑞士Buchi公司);BP211D型电子天平 (德国Sartorius公司);Milli-Q Plus型超纯水器 (美国Millipore公司);FD-1B-50型真空冷冻干燥机 (上海欧蒙实业有限公司)。

1.3 西青果提取物的制备

将100 g过40目筛的西青果粉末投料于超临界萃取釜中,以丙酮作为溶剂加入夹带剂罐中,对萃取釜、分离釜 (Ⅰ、Ⅱ) 和冷却釜进行加热或冷却。4种设备温度分别达到40、40、40 ℃及4 ℃时,打开携带剂泵,通过压缩泵对四者进行加压,当压力分别达到30、6、5.5、5 MPa时,开始萃取,调节溶剂流量为0.5 kg/h。恒温恒压萃取12 h后,得黑棕色液体。提取液经减压浓缩后得到丙酮提取物42.71 g。以水作为溶剂,重复以上操作得黑棕色液体,产物经冷冻干燥后得水提取物56.29 g。提取产物均密封保存于4 ℃的环境中。

1.4 总酚含量的测定

1.4.1 标准曲线的绘制

参考文献[7]的方法。精密称取10 mg没食子酸对照品,使用超纯水定容至50 mL作为没食子酸储备液。分别吸取0.0、0.05、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL的没食子酸储备液于25 mL容量瓶中,分别加入0.5 mL福林酚试剂,振荡使之混合均匀,暗处放置5 min后各加入2 mL 20%Na2CO3溶液,定容至25 mL。混匀后室温避光放置1 h,分别测试8种溶液在760 nm处的光密度值[D(760)]。以质量浓度为横坐标,光密度值为纵坐标,绘制标准曲线。

1.4.2 样品溶液的配制及测定

取丙酮提取物和水提取物各适量,精密称定,于10 mL容量瓶中,超纯水溶解并稀释至刻度,配制成1 mg/mL的丙酮提取物和水提取物母液。将两种提取物母液稀释适当的倍数,按照上述方法,测定光密度。根据标准曲线方程计算样品中的多酚含量,结果表示为没食子酸当量 (mg/g)。

1.5 DPPH法测定抗氧化活性

参考文献[8]的方法,稍加改动。将DPPH用无水乙醇配制成质量浓度为100 μg/mL的溶液。将西青果丙酮提取物、水提取物以及对照品Vc用乙醇分别配制成质量浓度为5、10、25、50、125、250 μg/mL的样品溶液备用。

准确移取样品待测溶液各3 mL与DPPH溶液3 mL,混匀后在室温下放置30 min,分别测试溶液在518 nm处的光密度值,记为Ai。准确移取样品待测液各3 mL与甲醇溶液3 mL,混匀后在室温下放置30 min,检测518 nm处的光密度值,记为Aj。准确移取DPPH溶液3 mL与甲醇3 mL,混匀后在室温下放置30 min,检测518 nm处的光密度值,记为A0。实验在避光条件下进行,用乙醇作为空白对照。采用SPSS16.0统计软件计算各提取物在DPPH方法下的半抑制浓度 (IC50),根据公式计算清除率。

1.6 ABTS法测定抗氧化活性

参考文献[8-9]的方法,稍加改动。将14 mmol/L的ABTS 5 mL和4.9 mmol/L的K2S2O8 5 mL混合产生ABTS+·,溶液在避光条件下静置16 h,工作液要求在734 nm波长下的光密度为 (0.70±0.02)。将西青果丙酮提取物、水提取物以及对照品Vc用甲醇分别配制成质量浓度为5、10、20、40、80、160、320、640 μg/mL的样品溶液备用。

准确移取样品待测溶液各158 μL与ABTS+·溶液3 mL,混匀后在室温下静置6 min,分别测试溶液在734 nm处的光密度值,记为B。准确移取样品待测液各158 μL与无水乙醇3 mL,混匀后在室温下静置6 min,检测734 nm处的光密度值,记为C。准确移取ABTS+·溶液3 mL与无水乙醇158 μL,混匀后在室温下静置6 min,检测734 nm处的光密度值,记为A。实验在避光条件下进行,用乙醇作为空白对照。采用SPSS 16.0统计软件计算各提取物在ABTS方法下的IC50值,根据公式计算清除率。

1.7 还原法测定抗氧化活性

参考文献[10]的方法,稍加改动。分别称取丙酮提取物、水提取物以及对照品Vc各40 mg,用甲醇配制成质量浓度为4 mg/mL的3种样品母液。将3种样品母液分别配制成质量浓度为0.005、0.01、0.02、0.04、0.08、0.16、0.32、0.64 mg/mL的样品溶液备用。以Vc为对照,甲醇做空白,平行操作实验3次,采用紫外分光光度法测定溶液在700 nm波长处的光密度值[D(700)]。测定的光密度值越高,代表化合物的还原能力越强。

2 结果 2.1 总酚含量测定

没食子酸标准曲线没食子酸标准曲线见图 1。结果显示,没食子酸在质量浓度0~8 μg/mL的范围内线性关系良好。拟合标准曲线方程为Y=0.108 9X+0.005 6,相关系数R2=0.999 4。

图 1 没食子酸标准曲线

总酚含量结果以丙酮为溶剂时,西青果提取物中总酚含量为 (622.19±1.35) mg/g;以水作提取溶剂时,西青果提取物中总酚含量为 (457.43±0.96) mg/g。相对于水提取物,单位质量内丙酮提取物中总酚含量提高了36.02%,表明丙酮对西青果内的酚酸类物质具备更强的亲和力。

2.2 DPPH自由基清除活性测定

西青果不同溶剂提取物对DPPH自由基清除活性的影响见图 2。结果显示,DPPH自由基清除率随着质量浓度的增加而逐渐升高。3种物质的质量浓度达到50 μg/mL时,清除率随质量浓度的增加趋于平缓。质量浓度为5~10 μg/mL时,丙酮提取物和水提取物对DPPH自由基清除率均小于Vc的清除率;质量浓度为25~250 μg/mL时,丙酮提取物的自由基清除活性优于Vc。在相同的质量浓度下,丙酮提取物对DPPH自由基的清除活性要高于水提取物的清除活性,表明丙酮提取物中具有更高的有效成分含量。浓度为250 μg/mL时,丙酮提取物和水提取物的清除率分别为95.26%和93.53%。在测试的剂量范围内,丙酮提取物和水提取物的IC50值分别为8.427 μg/mL和19.575 μg/mL,Vc的IC50值为5.419 μg/mL;根据总酚含量和IC50值结果可以推算出丙酮和水两种提取方法药材的IC50值分别为13.544 μg/mL和42.793 μg/mL,提示以丙酮作为溶剂的提取方法时西青果药材清除DPPH自由基效果是以水作为溶剂的3.15倍。

图 2 DPPH自由基清除活性

2.3 ABTS自由基清除实验测定

西青果丙酮、水提取物及Vc对ABTS自由基清除活性见图 3。结果显示,随着质量浓度的增加,西青果丙酮提取物和水提取物对ABTS自由基清除活性逐渐升高。质量浓度为0.64 mg/mL时,丙酮和水提取物的清除率分别为94.40%和94.02%,表明二者对清除ABTS自由基具有较好的效果。西青果丙酮提取物和水提取物的IC50值分别为20.273 μg/mL和33.064 μg/mL,Vc的IC50值为17.680 μg/mL;由总酚含量和IC50值结果可以推算出丙酮和水两种提取方法药材清除ABTS自由基的IC50值分别为32.583 μg/mL和72.282 μg/mL,提示以丙酮作为溶剂时西青果药材清除ABTS自由基效果是以水作为溶剂的2.22倍。

图 3 ABTS自由基清除活性

2.4 还原能力测定

提取物及对照品的还原力测试结果见图 4。结果显示,两种提取物的还原能力均表现出与提取物浓度的相关性,浓度越高,还原能力越强。表明西青果两种提取物均有一定的还原力,且丙酮提取物的还原力均大于同等质量浓度下水提取物的还原力。当质量浓度为0.005~0.04 mg/mL时,两种提取物光密度值随质量浓度的增加趋于平缓;当质量浓度为0.04~0.32 mg/mL时,两种提取物光密度值快速增加;当质量浓度为0.64 mg/mL时,丙酮、水提取物及Vc的光密度值分别为1.877、1.547和2.281。表明丙酮提取物的还原力强于水提取物的还原能力,但均小于Vc的还原能力。

图 4 铁离子还原能力测定结果

3 讨论

人体的许多疾病和组织损伤都与体内的氧化应激反应有关,其结果表现为自由基产生过多或自由基清除能力下降[11]。抗氧化剂是一种可以消除自由基,抑制脂质过氧化作用的活性物质,主要是通过终止自由基链反应而清除自由基,达到保护机体的目的[12]。寻找适当的外源性抗氧化剂对治疗疾病和保护人体健康很有益处。天然抗氧化剂分布广泛,研究表明黄酮类、多酚类、多糖类、皂苷类、有机酸类以及维生素等能有效清除人体自由基,还原氧化性物质,以保护机体健康[13-15]。我国拥有丰富的天然中草药资源,在抗氧化方面体现巨大的优越性和开发价值,从天然中草药中寻找低毒、高效、稳定的抗氧化剂已成为目前抗氧化剂发展的一个必然趋势。

按中国药典规定,西青果水溶性浸出物不得少于48.5%[1],说明西青果中水溶性成分丰富;根据文献[3]记载,西青果主要含可水解鞣质,是没食子酸或没食子酸衍生物通过酯键与葡萄糖形成的多酚,由于其分子结构中有较多羟基等极性基团,而表现出较大的亲水性;同时丙酮也是提取酚酸类成分 (可水解鞣质) 的最有效溶媒。因此,本实验分别以丙酮和水作为溶剂对西青果进行了提取。由于酚酸类成分的热稳定性差,本研究采用了超临界流体萃取仪进行高压流体萃取,取得了较好的提取效果。

自由基的清除是抗氧化剂发挥抗氧化作用的主要机制。目前,使用较多的抗氧化活性测定方法主要有ABTS自由基清除法、DPPH自由基清除法、羟自由基清除法和超氧阴离子自由基清除法等[16]。化合物抗氧化活性与其还原力相关,抗氧化剂通过提供电子使具有氧化性的自由基还原而达到清除自由基的效果,因此还原力可以作为衡量潜在抗氧化活性指标[17]。不同实验方法抗氧化作用的机理不尽相同,且同一种药物在不同的反应体系中抗氧化能力不完全一致。因此,本研究采用了3种测定抗氧化活性的方法来评价西青果丙酮及水提取物的抗氧化能力。

在本研究采用的评价体系中,丙酮、水两种提取物抗氧化能力的大小稍有不同,对DPPH和ABTS自由基的清除实验中,西青果丙酮提取物和水提取物均显现出较强的清除能力;其抗氧化能力与对照物天然抗氧化剂维生素C相当。IC50结果表明丙酮提取物清除两种自由基的效果更好。还原能力测试实验中丙酮提取物的还原能力强于水提取物的还原能力。本研究证实了西青果丙酮提取物和水提取物具有较好的抗氧化能力,且抗氧化能力大小与质量浓度呈现良好的剂量依赖关系。

不同溶剂提取物抗氧化作用不同,原因可能是不同溶剂提取物中抗氧化物质的种类和量均有所差异,最终在清除自由基能力的强弱上表现出来[18-19]。虽然本实验通过提取物总酚含量测定发现,丙酮提取物中总酚含量较水提取物高36.02%,但尚不能完全解释丙酮提取物DPPH自由基清除活性是水提取物的2.32倍和丙酮提取物ABTS自由基清除活性是水提取物的1.63倍,提示丙酮提取物除总酚含量较高外,提取物中化学成分可能也有一定差异,综合表现出清除自由基能力的差异。到底是何种成分或哪些成分存在差异,尚需对提取物进行化学成分分析来确定,其详细作用机制也有待进一步研究。

已有研究报道西青果中有较高含量的酚类化合物[20],如没食子酸、诃子酸、诃黎勒酸、柯里拉京、诃子宁等,这些成分具有抗氧化、抗炎等多种生物活性[21-22]。本研究证实西青果丙酮和水提取物,特别是丙酮提取物,具有优良的清除自由基能力和抗氧化能力,提示西青果提取物具有作为天然抗氧化剂进行开发的潜力。

参考文献
[1] 国家药典委员会. 中国药典2015版 (一部)[M]. 北京: 中国医药科技出版社, 2015: 130.
Chinese Pharmacopoeia Commission. Pharmacopoeia of the People's Republic of China (volume one)[M]. Beijing: China Medical Science Press Publishing, 2015: 130.
[2] 颜玉贞, 卢平华, 谢培山. 西青果与诃子的HPLC指纹图谱鉴别研究[J]. 中药新药与临床药理, 2001, 12(3): 173–178.
Yan Y Z, Lu P H, Xie P S. Study on Chromatographic Fingerprint of Immature Fruits of Terminalia (Xi Qing Guo) and the Fruits of Terminalia spp.(He Zi)[J]. Traditional Chinese Drug Research and Clinical Pharmacology, 2001, 12(3): 173–178. DOI:10.3321/j.issn:1003-9783.2001.03.007
[3] 刘芳, 秦红飞, 刘松青. 诃子化学成分与药理活性研究进展[J]. 中国药房, 2012, 23(7): 670–672.
Liu F, Qin H F, Liu S Q. Chemical constituents and pharmacological development of Terminalia chebula Retz[J]. China Pharmacy, 2012, 23(7): 670–672. DOI:10.6039/j.issn.1001-0408.2012.07.35
[4] Zhao Y, Liu F, Liu Y, et al. Anti-Arthritic Effect of Chebulanin on Collagen-Induced Arthritis in Mice[J]. PLoS One, 2015, 10(9): e0139052. DOI:10.1371/journal.pone.0139052
[5] Kusirisin W, Srichairatanakool S, Lerttrakarnnon P, et al. Antioxidative activity, polyphenolic content and anti-glycation effect of some Thai medicinal plants traditionally used in diabetic patients[J]. Med Chem, 2009, 5(2): 139–147. DOI:10.2174/157340609787582918
[6] Sarkar R, Hazra B, Mandal N. Reducing power and iron chelating property of Terminalia chebula (Retz.) alleviates iron induced liver toxicity in mice[J]. BMC Complement Altern Med, 2012, 12: 144. DOI:10.1186/1472-6882-12-144
[7] Salimikia I, Monsef-Esfahani H R, Gohari A R, et al. Phytochemical Analysis and Antioxidant Activity of Salvia chloroleuca Aerial Extracts[J]. Iran Red Crescent Med J, 2016, 18(8): e24836. DOI:10.5812/ircmj.24836
[8] 蔡恩博, 杨利民, 梁彩霞, 等. 小叶丁香枝不同部位抗氧化活性研究[J]. 人参研究, 2015, 27(2): 28–32.
Cai E B, Yang L M, Liang C X, et al. Study on Antioxidative Properties of Different Fractions from the branch of Syringa pubescens Turcz[J]. Ginseng Res, 2015, 27(2): 28–32. DOI:10.3969/j.issn.1671-1521.2015.02.010
[9] Liu J, Li X, Lin J, et al. Sarcandra glabra (Caoshanhu) protects mesenchymal stem cells from oxidative stress: a bioevaluation and mechanistic chemistry[J]. BMC Complement Altern Med, 2016, 16: 423. DOI:10.1186/s12906-016-1383-7
[10] 蔡恩博, 郭雪, 赵岩, 等. 牛蒡子75%乙醇提取物总酚含量及抗氧化活性研究[J]. 人参研究, 2015, 27(1): 19–23.
Cai E B, Guo X, Zhao Y, et al. The study of total phenolics content and antioxidant activities of 75% ethanol extracts from Arctium lappa L[J]. Ginseng Res, 2015, 27(1): 19–23. DOI:10.3969/j.issn.1671-1521.2015.01.006
[11] Arulselvan P, Fard M T, Tan W S, et al. Role of Antioxidants and Natural Products in Inflammation[J]. Oxid Med Cell Longev, 2016, 2016: 5276130. DOI:10.1155/2016/5276130
[12] Gupta V K, Sharma S K. Plants as natural antioxidants[J]. Nat Prod Rad, 2014, 5(4): 326–334.
[13] Zhang Y, Wang X, Wang Y, et al. Supplementation of cyanidin-3-O-β-glucoside promotes endothelial repair and prevents enhanced atherogenesis in diabetic apolipoprotein E-deficient mice[J]. J Nutr, 2013, 143(8): 1248–1253. DOI:10.3945/jn.113.177451
[14] Zhu X, Hu S, Zhu L, et al. Effects of Lycium barbarum polysaccharides on oxidative stress in hyperlipidemic mice following chronic composite psychological stress intervention[J]. Mol Med Rep, 2015, 11(5): 3445–3450. DOI:10.3892/mmr.2014.3128
[15] Wang B F, Lin S, Bai M H, et al. Effects of SSd Combined with Radiation on Inhibiting SMMC-7721 Hepatoma Cell Growth[J]. Med Sci Monit, 2014, 20: 1340–1344. DOI:10.12659/MSM.891355
[16] 刘志东, 郭本恒, 王荫榆. 抗氧化活性检测方法的研究进展[J]. 天然产物研究与开发, 2008, 20(3): 563–567.
Liu Z D, Guo B H, Wang Y Y. Methods to Determine Antioxidative Activity[J]. Nat Prod Res Dev, 2008, 20(3): 563–567. DOI:10.3969/j.issn.1001-6880.2008.03.045
[17] Li J E, Cui S W, Nie S P, et al. Structure and biological activities of a pectic polysaccharide from Mosla chinensis Maxim. cv. Jiangxiangru[J]. Carbohydr Polym, 2014, 105: 276–284. DOI:10.1016/j.carbpol.2014.01.081
[18] 邝春林, 吕都, 黄霞, 等. 杭白菊不同溶剂提取物的抗氧化活性研究[J]. 食品工业科技, 2015, 36(21): 83–87.
Kuang C L, Lyu D, Huang X, et al. Research of the antioxidant activity of Chrysanthemum Morifolium's extracts with different solvents[J]. Sci Tech Food Ind, 2015, 36(21): 83–87. DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2015.21.008
[19] 涂宗财, 傅志丰, 王辉, 等. 红薯叶不同溶剂提取物抗氧化性及活性成分鉴定[J]. 食品科学, 2015, 36(17): 1–6.
Tu Z C, Fu Z F, Wang H, et al. Comparison of Antioxidant activities of various solvent extracts of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) leaves and identification of antioxidant constituents of the merthanol extract[J]. Food Sci, 2015, 36(17): 1–6. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201517001
[20] Rangsriwong P, Rangkadilok N, Satayavivad J, et al. Subcritical water extraction of polyphenolic compounds from Terminalia chebula Retz.fruits[J]. Separation & Purification Technology, 2009, 66(1): 51–56. DOI:10.1016/j.seppur.2008.11.023
[21] Manosroi A, Jantrawut P, Akazawa H, et al. Biological activities of phenolic compounds isolated from galls of Terminalia chebula Retz(Combretaceae)[J]. Nat Prod Res, 2010, 24(20): 1915–1926. DOI:10.1080/14786419.2010.488631
[22] Chang C L, Lin C S. Phytochemical Composition, Antioxidant Activity, and Neuroprotective Effect of Terminalia chebula Retzius Extracts[J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2012, 2012: 125247. DOI:10.1155/2012/125247
http://dx.doi.org/10.16016/j.1000-5404.201611126
中国人民解放军总政治部、国家科技部及国家新闻出版署批准,
由第三军医大学主管、主办

文章信息

赵鸿燕, 刘芳, 谢永红, 戴青, 刘松青.
Zhao Hongyan, Liu Fang, Xie Yonghong, Dai Qing, Liu Songqing.
西青果丙酮及水提取物体外抗氧化活性初步研究
Antioxidant activities of acetone and aqueous extracts from Terminalia chebula Retz. in vitro
第三军医大学学报, 2017, 39(9): 891-896
Journal of Third Military Medical University, 2017, 39(9): 891-896
http://dx.doi.org/10.16016/j.1000-5404.201611126

文章历史

收稿: 2016-11-14
修回: 2017-01-11

相关文章

工作空间